قبول وتسجيل المواد الحيوية في دراسة PCR. طرق أخذ المواد الحيوية للبحث عن طريق تفاعل البوليميراز المتسلسل. تقنية PCR

تيار

MU 4.2.2039-05

تعليمات منهجية

4.2 طرق التحكم. العوامل البيولوجية والميكروبيولوجية

تقنية جمع ونقل المواد الحيوية إلى علم الأحياء الدقيقة
مختبرات

تاريخ التقديم 2006-07-01

2. موصى به للموافقة عليه من قبل لجنة التقنين الصحية والصحية للدولة في إطار الخدمة الفيدرالية للإشراف على حماية حقوق المستهلك ورفاه الإنسان في 6 أكتوبر 2005 (المحضر رقم 3).

3 - تمت الموافقة عليها وتقديمها من قبل رئيس الخدمة الفيدرالية للإشراف على حماية حقوق المستهلك ورفاه الإنسان ، رئيس الأطباء الصحيين في الدولة الاتحاد الروسي GG Onishchenko 23 ديسمبر 2005

5. مقدمة للمرة الأولى.

1 مجال الاستخدام

1 مجال الاستخدام

1.1 حددت المبادئ التوجيهية قواعد جمع ونقل المواد البيولوجية إلى المختبرات الميكروبيولوجية من أجل تحسين جودة نتائج البحوث المختبرية وتنظيم تدابير مكافحة الأوبئة والوقائية ، وكذلك الوقاية من عدوى المستشفيات بين العاملين في المجال الطبي والمرضى.

1.2 تهدف المبادئ التوجيهية إلى استخدامها من قبل هيئات ومؤسسات الخدمة الفيدرالية للإشراف على حماية حقوق المستهلك ورفاهية الإنسان ، ويمكن أيضًا استخدامها من قبل السلطات والمنظمات الصحية.

2. أحكام عامة

2.1. يعد الحصول على بيانات موثوقة حول تحديد مصادر العدوى أمرًا ضروريًا للتنظيم الفعال في الوقت المناسب لتدابير مكافحة الأوبئة والوقاية ، وتقييم مستوى قابلية السكان للإصابة أثناء المراقبة الوبائية.

2.2. ستتيح التقنية المطورة لجمع ونقل المواد البيولوجية إلى المعامل الميكروبيولوجية تقليل مستوى الخطأ التحليلي وتحسين جودة عمل المختبرات في تحديد النتائج.

2.4 يمكن استخدام المبادئ التوجيهية عند إجراء المراقبة الوبائية لمقاومة مضادات الميكروبات لمسببات الأمراض المعزولة والمحددة في المختبر ، مما يؤدي إلى الاستخدام الأمثل للأدوية والتدابير المضادة للميكروبات في مجال الوقاية من المقاومة ومكافحتها واحتوائها على المستويات المحلية والإقليمية والوطنية.

3. الاشتراطات العامة لأخذ عينات من المواد البيولوجية لأبحاث الميكروبيولوجيا

3.1. لمنع إصابة الكادر الطبي والمرضى أثناء جمع عينات المواد الحيوية وتسليمها إلى المختبر ، من الضروري:

لا تلوث السطح الخارجي للأطباق أثناء جمع العينات وتسليمها ؛

لا تلوث الوثائق المصاحبة (الإحالات) ؛

تقليل الاتصال المباشر لعينة المواد الحيوية بأيدي العامل الطبي الذي يجمعها ويسلمها إلى المختبر ؛

استخدام حاويات (حاويات) معقمة يمكن التخلص منها أو معتمدة حسب الأصول لجمع العينات وتخزينها وتسليمها لهذه الأغراض ؛

نقل العينات في ناقلات أو مداخن بأعشاش منفصلة ؛

مراقبة الظروف المعقمة لمنع إصابة المريض أثناء إجراء التدابير الغازية ؛

جمع العينات في الأواني الزجاجية المعقمة التي يمكن التخلص منها (غير ملوثة بالمواد الحيوية ، غير متضررة من الشقوق ، الحواف المتكسرة والعيوب الأخرى)

3.2 يجب جمع عينات المواد الحيوية على النحو التالي:

قبل البداية العلاج بالمضادات الحيوية، في حالة عدم وجود مثل هذه الفرصة - مباشرة قبل إعادة إدخال (استقبال) الأدوية ؛

في الكمية (الوزن والحجم) اللازمة لإجراء التحليل ، لأن كمية غير كافية من المواد الحيوية للبحث تؤدي إلى نتائج خاطئة ؛

مع الحد الأدنى من تلوث المواد بالميكروفلورا العادية ، tk. يؤدي وجوده إلى تفسير خاطئ للنتائج التي تم الحصول عليها ، على سبيل المثال ، في دراسة البلغم ، وعينات من الأنف ، والبلعوم (البلعوم) ، والأعضاء التناسلية ، إلخ.

3.3 عند جمع عينة ، تأكد من أنه عند فتح حاوية بمادة حيوية ، لا يتشكل الهباء في المختبر: يتم نقل عينات الدم وسوائل الجسم الأخرى بعناية من حقنة دون رغوة إلى جافة و / أو مملوءة بالوسيط ( مضادات التخثر).

3.4. في اتجاه الدراسة تشير إلى: اسم العائلة ، الاسم ، اسم الأب للمريض ؛ سنة الولادة؛ الفرع الذي يوجد فيه ؛ رقم السجل الطبي (بطاقة العيادة الخارجية) ؛ تشخبص؛ المواد المرسلة لمهام البحث والبحث ؛ تاريخ ووقت أخذ المادة (بالساعات) ؛ الأدوية المضادة للبكتيريا (المناعية) ، إذا تم إعطاء العينة على خلفية المضادات الحيوية و / أو العلاج المناعي ؛ اسم العائلة والاسم واسم اسم الطبيب المعالج (الاستشاري) الذي يرسل العينة للفحص. عند إرسال المواد الحيوية التي تم الحصول عليها في التشريح ، يشار أيضًا إلى القسم الذي توفي فيه المريض.

3.5 قبل جمع العينة ، خاصة عند استخدام الطرق الغازية ، يتم اتخاذ احتمالية الخطر على المريض والفائدة ، وكذلك أهمية هذا النوع المعين من المواد الحيوية لأغراض تحديد التشخيص السريري وتقييم التدابير العلاجية الجارية أو المخطط لها. داخل الحساب.

4. المتطلبات العامة لتسليم عينات المواد الحيوية إلى معمل ميكروبيولوجي

4.1 يتم إرسال جميع العينات التي تم جمعها إلى مختبر ميكروبيولوجيفور الاستلام ، باستثناء حالات استخدام الحاويات بوسائط النقل المعتمدة للاستخدام لهذه الأغراض في الاتحاد الروسي بالطريقة المحددة.

هذا ضروري من أجل:

الحفاظ على صلاحية مسببات الأمراض وإمكانية عزل الكائنات الحية الدقيقة التي تتطلب ظروف زراعة خاصة (المستدمية وغيرها) ؛

منع فرط نمو الكائنات الحية الدقيقة سريعة النمو والنشطة ؛

الحفاظ على نسبة التركيزات الأولية للعزلات في وجود الجمعيات الميكروبية في العينة ؛

تقليل وقت ملامسة العينة ببعض المطهرات الموضعية ، والتي قد يكون لها نشاط مضاد للجراثيم ؛

تحديد التشخيص السريري لمرض التهابي معدي وتقييم نتائج العلاج.

4.2 يُسمح باستخدام طرق بديلة لزيادة وقت تسليم المادة الحيوية إلى المختبر.

يجب تخزين العينات في الثلاجة في درجة حرارة 2-8 درجة مئوية ، باستثناء ما هو مذكور أدناه.

4.2.1. عندما يتم تخزين العينة في حاوية نقل متخصصة (نظام نقل) معتمد للاستخدام وفقًا للإجراء المتبع ، وهو عبارة عن أنبوب معقم يمكن التخلص منه مع أجار أو وسط نقل سائل ومسبار مسحة مدمج في السدادة ومعقم معبأ مع الة النفخ. يتم تخزين العينات في هذه الحاويات في درجة حرارة الغرفة (18-20 درجة مئوية). وسائط النقل كثيفة خاصة كربون مفعلوبدونها ، تسمح بالحفاظ على حيوية الكائنات الحية الدقيقة التي تتطلب ظروف زراعة خاصة لمدة 48-72 ساعة.

بالنسبة لعينات اللاهوائية والنباتات البرازية ، يتم استخدام حاويات خاصة مع وسيلة نقل ، وأنابيب اختبار مع وسائط لعزل العطيفة والهيليكوباكتر ، المعتمدة للاستخدام بالطريقة المحددة. تخلق مثل هذه البيئات جوًا متنوعًا للكائنات الحية الدقيقة ، مما يساعد على تقليل عملية التمثيل الغذائي ، ويمنع النمو ، ويمنع تجفيفها وتراكم نفاياتها.

يتم خلط كل عينة يتم جمعها في وسط سائل جيدًا مع الوسيط.

4.2.2. عندما يتم زرع الدم في مرق ، ثم بعد تلقي العينة يتم تخزينها في منظم الحرارة عند درجة حرارة 35-37 درجة مئوية.

إذا تم جمع العينات في حاويات خاصة للدراسة اللاحقة باستخدام وسيط من مرحلتين ، فيجب تخزينها في درجة حرارة الغرفة (18-20 درجة مئوية).

4.2.3. عند وجود كائنات دقيقة تعتمد على درجة الحرارة (Neisseria sp.) ، تُترك العينات في درجة حرارة الغرفة (18-20 درجة مئوية).

4.3 لنقل العينات التي تم فحصها بحثًا عن وجود الأكياس الهوائية واللاهوائية الاختيارية ، استخدم:

أنابيب اختبار جافة معقمة يمكن التخلص منها مع مسبار ممسحة (درنات) أو حاويات مع وسيط نقل معتمد للاستخدام لهذه الأغراض في الاتحاد الروسي بالطريقة المحددة ؛ يُسمح باستخدام أنابيب زجاجية معقمة مختومة بسدادة منفذة للغاز مع مسبار مسحة مدمج محضر في المختبر ؛

حاويات معقمة يمكن التخلص منها مع غطاء لولبي (يُسمح بالزجاج مع سدادة نفاذة للغاز) - لجمع عينات من البول والبلغم والبراز وغسل القصبات الهوائية والخزعة (قطع من الأنسجة) ؛

معقمة يمكن التخلص منها بغطاء لولبي أو أنابيب اختبار زجاجية - لتجميع السوائل المعقمة ، وغسل القصبات الهوائية ، وفصلها عن المصارف أو الكشط ؛

أطباق بتري معقمة - لجمع عينات الشعر أو لنقل الكشط بعلامات على قاع الطبق ؛

مسحات خاصة من البلعوم الأنفي ومسحة الجهاز البولي التناسلي مع محور من الألومنيوم (قطر المحور - 0.9 مم) ومسحة صغيرة من القطن أو الفسكوز عند الطرف (قطر السدادة - 2.5 مم) مثبتة في سدادة تسد أنبوب زجاجي معقم يمكن التخلص منه - للحصول على عينات من البلعوم الأنفي لبكتريا السعال الديكي ومن مجرى البول عند الرجال.

4.4 لنقل العينات التي تم فحصها بحثًا عن وجود اللاهوائية ، يتم استخدام حاويات ذات وسائط نقل خاصة وأنابيب اختبار بوسط ثيوجليكول ؛ أنابيب اختبار بوسائط لعزل العطيفة والهيليكوباكتر ، المعتمدة للاستخدام لهذه الأغراض في الاتحاد الروسي بالطريقة المقررة. يتم خلط العينة التي تم جمعها في وسط سائل جيدًا معها. يوصى بالطرق التالية للحصول على العينات:

يتم شفط التفريغ من المصارف المستخدمة في الشفط النشط للتجاويف باستخدام حقنة معقمة بمكبس محكم بحجم 2-4 مل ؛ يتم وضع إبرة معقمة على المحقنة المملوءة ، وتغلق بقطعة قطن معقمة ، ويتم إزالة الهواء الزائد من المحقنة ؛ يتم إسقاط قطعة قطن في محلول مطهر ؛ يتم حقن نهاية الإبرة في سدادة مطاطية معقمة وفي هذا الشكل يتم تسليم حقنة المادة إلى المختبر ؛

يتم جمع محتويات بؤر العدوى والتجاويف ، التي تم الحصول عليها عن طريق ثقبها ، في حجم 2-4 مل باستخدام محاقن 2 ، 5 ، 10 مل بمكبس محكم ؛ يتم إزالة الهواء الزائد من المحقنة عن طريق تغطية الإبرة بقطعة قطن معقمة ، والتي يتم التخلص منها بعد ذلك في محلول مطهر ؛ يتم تطهير الإبرة عن طريق المسح بمسحة مبللة بكحول إيثيلي 70 ٪ ؛ للختم ، يتم حقن نهاية الإبرة في سدادة مطاطية معقمة ، وفي هذا الشكل يتم تسليم المحقنة مع المادة إلى المختبر.

عند جمع كمية كبيرة من المواد (3 مل أو أكثر) ، يمكن أن تظل البكتيريا اللاهوائية قابلة للحياة لمدة 24 ساعة في درجة حرارة الغرفة (18-20 درجة مئوية).

إذا كان التفريغ بضع قطرات فقط ، يتم نقله من المحقنة إلى حاوية صغيرة أو إلى أنبوب اختبار مع وسيط النقل فورًا بعد الاستلام (يتم استلام الحاوية مع وسائط النقل في المختبر في اليوم السابق).

يتم جمع قطع الأنسجة (مادة الخزعة) في حالة الاشتباه في وجود عدوى لاهوائية في حاويات معقمة يمكن التخلص منها بغطاء لولبي (مسموح - في طبق زجاجي بغطاء أرضي) وتسليمها إلى المختبر على الفور.

4.5 لنقل العينات التي تم فحصها بحثًا عن وجود فيروسات ، يتم استخدام حاويات خاصة بها وسط سائل للحفاظ على الفيروسات.

5. عينات من أنواع مختلفة من المواد الحيوية والبيئة المحيطة بالمريض

الجدول 1

الأواني الزجاجية المستخدمة في تسليم العينات إلى المختبر

ملحوظة.يجب تسليم عينات القيح والسوائل والأنسجة إلى المختبر في حاويات خاصة معقمة يمكن التخلص منها مع أغطية لولبية. مجسات المسحة - تجف في أنابيب اختبار معقمة يمكن التخلص منها (درنات) أو في حاويات مزودة بوسيط نقل ، إذا تعذر تسليم المادة إلى المختبر فور أخذ العينات. لهذه الأغراض ، يمكنك استخدام وسائط النقل ، بما في ذلك. في أنابيب اختبار يمكن التخلص منها ومعبأة مع مسبار مسحة معقمة ، ومعتمدة للاستخدام في الاتحاد الروسي بالطريقة المحددة. يتم إنتاج (تحضيرات) سدادات قطنية (محضرة) باستخدام عدد من المواد: للسدادات نفسها (شاش قطني ، قطن ، فيسكوز ، داكرون) ، لمحور سدادة المسبار (خشب ، بلاستيك ، معدن غير قابل للصدأ - تيتانيوم ، فولاذ ، الألومنيوم) ووسط أجار كثيف: مع وبدون الكربون اللاهوائي.


العديد من اللاهوائيات المهمة سريريًا ، مثل Clostridium perfringens ، Bacteroides fragilis ، تتحمل بشكل كافٍ وجود الأكسجين ويتم حفظها جيدًا في كمية كبيرة من القيح وعينات السوائل وأنسجة الجسم ، وكذلك على مسحة في النقل الخاص أو ثيوجليكول وسائل الإعلام.

أكثر حساسية للأكسجين (على سبيل المثال ، البكتيريا المغزلية) يتم حفظها جيدًا أيضًا في عينة من المواد البيولوجية ، وإذا تم زرع المادة في غضون 2-3 ساعات من لحظة جمعها ، فلا يلزم إيلاء اهتمام خاص لطريقة التسليم . اللاهوائية التي تتطلب ظروف زراعة خاصة لا تعيش على مسبار مسحة في حاوية نقل مع وسيط غير مخصص لتوصيل اللاهوائيات ، باستثناء الحاويات التي تحتوي على وسائط نقل خاصة أو ثيوجليكول.

في الوقت نفسه ، تنمو هذه الكائنات الدقيقة لمدة 5-7 أيام أطول من الوقت الذي تحتضن خلاله معظم المختبرات العملية الأطباق الملقحة بمواد لعزل وتحديد الأيروبس واللاهوائيات الاختيارية. لهذا السبب ، فإن الاختبار الروتيني لوجود اللاهوائيات باستخدام حاويات نقل لاهوائية خاصة مع وسائط تبدو غير مناسبة في المختبرات العملية العادية ، ويمكن للمرء أن يقتصر على اختبار الأنابيب باستخدام وسيط ثيوجليكول.

لجمع ونقل العينات ، يتم استخدام الوسائط والحاويات والأدوات والمواد المعتمدة للاستخدام في الاتحاد الروسي بالطريقة المحددة.

6. قواعد وتقنيات الحصول على عينات من أنواع مختلفة من المواد البيولوجية للبحوث الميكروبيولوجية

يوصى بالحصول على أي عينة من المريض تتطلب استخدام طرق جائرة من قبل الطبيب (باستثناء عينة الدم التي يمكن جمعها من قبل ممرضة الإجراءات).

إذا كان من الضروري جمع المواد باستخدام مسبار مسحة على سطح تشغيل مفتوح أو في حالة تدخل غازي آخر ، فيجوز استخدام مجسات المسحة الجاهزة بمستوى أمان دولي على الأقل من الفئة IIA ، المعتمدة للاستخدام لهذه أغراض في الاتحاد الروسي بالطريقة المنصوص عليها.

6.1 عينات من الدم

يتم الحصول على عينات لتحديد وجود عوامل بيولوجية في الدم (تجرثم الدم ، viremia ، إلخ) عن طريق بزل الوريد من الأوردة المحيطية (غالبًا وريد الكوع) أو الشرايين أو من الكعب عند الأطفال حديثي الولادة.

لا يُسمح بجمع العينات من القسطرة الوريدية أو داخل الشرايين الداخلية إلا في حالات الاشتباه في وجود عدوى مرتبطة بالقسطرة أو عدم القدرة على الحصول عليها عن طريق بزل الوريد.

6.1.1. في حالة الإنتان الحاد والتهاب السحايا والتهاب العظم والنقي والتهاب المفاصل والالتهاب الرئوي الجرثومي الحاد غير المعالج والتهاب الحويضة والكلية ، يتم جمع عينتين من وعاءين أو قسمين من الأوعية الدموية قبل بدء العلاج بالمضادات الحيوية.

6.1.2. إذا كنت تشك في وجود التهاب الشغاف والإنتان البطيء مع تركيز صغير (10-30 CFU / مل) من العامل الممرض في الدورة الدموية:

في حالة وجود عملية حادة ، يتم جمع عينتين من قسمين من الأوعية (أوعية مختلفة) خلال أول 1-2 ساعة من ارتفاع درجة حرارة الجسم (ليس في ذروة درجة الحرارة!) وقبل بدء العلاج ؛

في الدورة تحت الحاد أو البطيء ، يتم جمع 3 عينات في اليوم الأول بفاصل 15 دقيقة أو أكثر. إذا كانت جميع العينات سلبية ، في اليوم الثاني بعد البذر ، يتم جمع 3 عينات أخرى ؛

في المرضى الذين يعانون من التهاب الشغاف الذين يتلقون المضادات الحيوية ، يتم جمع عينتين منفصلتين في كل يوم من الأيام الثلاثة مع ديناميات سريرية إيجابية للعلاج ؛

لتأكيد التشخيص السريري لـ "التهاب الشغاف المعدي" ، إذا كان من المستحيل الحصول على العدد المطلوب من عينات الدم من المريض للتحليل الميكروبيولوجي أو إذا كانت المزروعات سلبية ، يتم إرسال عينات الدم لدراسة العوامل المناعية لنظام الدفاع في الجسم (نظام مقاومة العدوى - SAIR) ؛ يتم التسليم إلى المختبر في زجاج معقم أو أنابيب اختبار يمكن التخلص منها بغطاء (الفلين) ، تم الحصول عليها في اليوم السابق في المختبر ؛

إذا كان المريض يعاني من أمراض القلب الخلقية (CHD) ، فيجب أن نتذكر أن أمراض القلب التاجية هي مقدمة لالتهاب الشغاف المعدي ، ويتم تضمين تحديد العوامل المناعية لـ CAD في خوارزمية الفحص لمثل هذا المريض.

6.1.3. في المرضى الذين يشمل علاجهم مضادات حيوية ، يتم جمع 6 عينات في غضون 48 ساعة ؛ يجب جمع العينات على الفور قبل تناول الجرعة التالية من الدواء (أخذ).

6.1.4. إذا كان المريض يعاني من حمى مجهولة المصدر ، يتم في البداية جمع عينتين من أوعية دموية مختلفة (قسمان من الوعاء الدموي) ، ثم بعد 24-36 ساعة ، عينتان أخريان على خلفية ارتفاع درجة حرارة الجسم (ليس في ذروة درجة الحرارة!).

6.1.5. تقنية الحصول على عينة الدم. يتم جمع عينات الدم للزرع بواسطة شخصين بجانب سرير المريض أو في غرفة العلاج.

للحصول على عينة ، قم بما يلي:

تطهير منطقة الجلد فوق الوعاء المختار للثقب: عالج الجلد بمسحة مبللة بكحول إيثيلي 70٪ ، ثم بمسحة أخرى مبللة بمحلول اليود بنسبة 1-2٪ أو بمطهر آخر معتمد للاستخدام لهذه الأغراض بالطريقة الموصوفة ، في حركات دائرية ، بدءًا من المركز ، في غضون 30 ثانية ؛

انتظر حتى تجف المنطقة المعالجة. لا يُسمح بجس الوعاء الدموي بعد علاج الجلد قبل إدخال الإبرة ؛

عند العمل باستخدام قوارير ذات وسيط مزدوج: باستخدام حقنة معقمة ، اجمع 10 مل من الدم من البالغين ، من الأطفال - 5 مل ؛ افتح القارورة فوق شعلة مصباح الروح ؛ حقن الدم في القارورة من المحقنة ، بعد إزالة الإبرة ؛ احرق عنق القارورة وفلينها في لهب مصباح كحول ، وأغلق القارورة بفلين ؛ بعناية ، حتى لا تنقع سدادة القارورة ، اخلطي محتوياتها في حركة دائرية.

عند استخدام قوارير جاهزة مع وسيط وكواشف تعمل على تحييد المضادات الحيوية وتدمير خلايا الدم ، أو بدونها ، المعتمدة للاستخدام لهذه الأغراض في الاتحاد الروسي بالطريقة الموصوفة ، يتلقى البالغون 10-30 مل من الدم ، والأطفال - 0.5 - 3.0 مل.

حيث:

بالتوازي مع تطهير منطقة الجلد للثقب ، يتم معالجة أغطية الزجاجات بنسبة 70 ٪ من الكحول الإيثيلي (لا يُسمح باستخدام محلول اليود لعلاج الأغطية عند العمل مع الزجاجات ، على سبيل المثال ، Bactec و Vital وغيرها من المنتجات المماثلة المعتمدة للاستخدام لهذه الأغراض في الاتحاد الروسي بالترتيب المعمول به) ؛

يتم إدخال الدم المأخوذ من البالغين ، بأحجام متساوية ، أثناء ثقب سدادة الحاوية ، في الحاويات "الهوائية" و "اللاهوائية" ؛ تلقي الدم من الأطفال - في زجاجة خاصة "طفل" ، أثناء ثقب الفلين من الحاوية.

6.1.6. بعد بزل الوريد وثقافة الدم في وعاء به وسيط لمنع حدوث تهيج محتمل (حرق) ، تتم إزالة بقايا اليود من منطقة جلد المريض بمسحة مبللة بكحول إيثيلي 70٪.

6.2 اختبارات العمليات المعدية والتهابات الجهاز العصبي المركزي (CNS)

6.2.1. الخمور. يتم إرسال 4.0-5.5 مل من السائل النخاعي الذي تم الحصول عليه عن طريق البزل القطني من الفراغ تحت العنكبوتية بين الفقرات L3-L4 أو L4-L5 أو L5-S1 ، وكذلك عن طريق ثقب البطينين الجانبيين للدماغ ، إلى المختبر الميكروبيولوجي للبحث .

يتم جمع العينات عن طريق ملء ثلاثة أنابيب اختبار ببطء بثلاثة أجزاء من المواد للبحث في المختبرات. استخدم أنابيب اختبار معقمة ذات أغطية محكمة الغلق (يمكن التخلص منها بسدادة أو زجاج بسدادة مطاطية معقمة).

من بين أنابيب البزل القطني الثلاثة ، أرسل دائمًا الأنبوب ذي المحتوى الأكثر غموضًا ، وعادة ما يكون الأنبوب الثاني في عملية التجميع.

عند استلام المادة عن طريق ثقب البطينين الجانبيين للدماغ ، يتم إدخال السائل النخاعي المأخوذ حديثًا من المحقنة ، بعد إزالة الإبرة سابقًا ، في أنبوب اختبار معقم فوق شعلة مصباح كحول ، عنق أنبوب الاختبار ويتم حرق الفلين في لهب مصباح كحول (عند العمل بأنبوب اختبار زجاجي مغلق بشاش قطني أو سدادات مطاطية) ، أنبوب سدادة مغلق.

في جميع الحالات التي يشتبه في إصابتها بالتهاب السحايا ، بالإضافة إلى السائل الدماغي النخاعي ، يتم جمع المواد من بؤر العدوى المزعومة: مسحات من البلعوم الأنفي والأذن الوسطى وعينات الدم وإرسالها إلى المختبر مع السائل النخاعي. بطريقة جيدةالحفاظ على المدى الطويل (حتى 48 ساعة) من المكورات السحائية هو أخذ المادة مع سدادة مسبار مسحة ووضعها في أنبوب اختبار مع وسيط نقل مع أو بدون الفحم المنشط.

يتم إرسال الخمور الخاصة بالبحوث الميكروبيولوجية على الفور إلى المختبر على وسادة تدفئة للحفاظ على درجة حرارة 35-37 درجة مئوية. إذا لم يكن ذلك ممكنًا ، يتم جمع السائل النخاعي في حاوية بها وسيط نقل ويترك في الثلاجة (عند درجة حرارة 4-8 درجة مئوية) حتى الصباح ، ثم يتم تسليمه إلى المختبر.

إذا كان من الضروري إجراء دراسات فيروسية ، توضع عينات السائل الدماغي النخاعي في الثلاجة عند درجة حرارة 2-8 درجة مئوية أو مجمدة ، أو يتم تخزينها في درجة حرارة الغرفة باستخدام حاويات ذات وسط سائل خاص.

6.2.2. مواد من خراجات المخ. بالنظر إلى أنه في 90٪ من الحالات تنمو اللاهوائية في العينة ، يتم سحب المادة من البؤرة وإرسالها إلى المختبر في حاويات ذات وسيط لاهوائي معتمد للاستخدام لهذه الأغراض في الاتحاد الروسي بالطريقة المحددة ، أو في حقنة التي تم جمع العينة بها ، بعد إزالة الإبرة وإغلاق المحقنة بسدادة مطاطية معقمة.

يتم تسليم العينة فور استلامها.

6.2.3. مادة الخزعة. يتم الحصول على العينات أثناء العملية ، وتوضع في وعاء به وسط لا هوائي أو في أنبوب اختبار معقم بوسط ثيوجليكول ، مغلق بسدادة مطاطية معقمة.

يتم إرسال المواد إلى المختبر على الفور.

6.3 اختبارات العمليات المعدية والتهابات العين

يتم جمع معظم عينات العيون من قبل طبيب عيون. يجب تلقيح هذه العينات على وسائط مغذية في سرير المريض أو في غرفة العلاج أو في مكتب الطبيب وقت الإدخال ، ويجب نقل المادة الملقحة إلى المختبر للزراعة والعزل والتعرف على وتحديد مدى قابلية المضاد الحيوي للتأثر بالمضادات الحيوية. مسببات الأمراض. يتم جمع العينات المأخوذة باستخدام الطرق الغازية وغيرها من الأساليب العدوانية بالتوازي مع مسحة الملتحمة ، والتي تعمل في مثل هذه الحالات كعنصر تحكم.

في اليوم السابق ، لمدة 6-8 ساعات (ليلاً) ، قم بإلغاء جميع الأدوية والإجراءات.

في ظل وجود مظاهر سريرية محددة لعملية التهابية معدية أو شكوك لدى الطبيب ، من الضروري تحضير مسحات قبل التخدير لتحديد الكلاميديا ​​والفيروسات ، وإرسال الأدوية إلى المختبر. للحفاظ على الكلاميديا ​​والفيروسات ، يتم جمع المواد في حاويات مع وسائط النقل.

يتم جمع التفريغ بقضيب زجاجي معقم أو سدادة مسبار معقم: يتم إجراء حركتين أو ثلاث حركات على طول الغشاء المخاطي للثنية الانتقالية السفلية ، من حافة الجفون ؛ مع قرحة - من القرنية (بعد التخدير) ، مع "التهاب الملتحمة الزاوي" - من زوايا الجفون.

يتم جمع السر من الكيس الدمعي بمسحة معقم بعد التدليك اللطيف.

توضع المادة المأخوذة بعصا و / أو مسبار مسحة في حاوية بها وسيط نقل أو في أنبوب زجاجي معقم بوسط سائل ويتم تسليمها إلى المختبر ، مع الحرص على عدم نقع سدادة السليلوز أو الشاش القطني في الة النفخ.

عند استخدام مجسات المسحة ، يفضل استخدام حاويات يمكن التخلص منها مع وسيط نقل أو أنابيب زجاجية معقمة مع سدادات قطنية شاش مملوءة بوسط معقم.

يمكن الحصول على أدق المعلومات حول العامل المسبب للعملية الالتهابية من التحليل الميكروبيولوجي للكشط.

6.3.1. التهاب الملتحمة والتهاب الجفن والملتحمة. في اليوم السابق ، لمدة 6-8 ساعات (ليلاً) ، يتم إلغاء جميع الأدوية والإجراءات في المرضى في المستشفى.

يتم جمع عينات من الملتحمة باستخدام فسكوز معقم أو مبلل مسبقًا أو سدادة مسبار ألجينات الكالسيوم الموجودة في أنبوب معقم يمكن التخلص منه أو أنبوب زجاجي. يتم جمع العينات من كل عين بمسحات منفصلة بحركتين أو ثلاث حركات دائرية فوق الغشاء المخاطي.

الدرنات مع مسحات من كل عين علامة "يمين" و "يسار" على التوالي ، و في الحالإرسالها إلى المختبر.

قبل الكشط ، يتم حقن 1-2 قطرات من مخدر ، على سبيل المثال ، بروباراكايين هيدروكلوريد أو أي عقار آخر متاح ومعتمد للاستخدام لهذه الأغراض بالطريقة الموصوفة.

بحركتين أو ثلاث حركات حادة قصيرة في اتجاه واحد ، يتم جمع الكشط من الملتحمة باستخدام ملعقة معقمة خاصة. أثناء التلاعب ، يجب أن تكون العين مفتوحة.

يجب الحرص على عدم لمس الرموش عند جمع العينة.

قم بإعداد لطاختين على الأقل من كل عين عن طريق وضع المادة على شريحة زجاجية نظيفة منزوعة الدهن بحركة دائرية على مساحة قطرها 1 سم.

يتم إصلاح المسحات لمدة 5 دقائق في كحول ميثيل 95٪ ، وهو في حاوية خاصة مغلقة بإحكام.

في الحاليتم نقل أنابيب الاختبار مع مجسات المسحة والنظارات ذات اللطاخات إلى المختبر.

6.3.2. التهاب القرنية الجرثومي. في اليوم السابق ، لمدة 6-8 ساعات (ليلاً) ، يتم إلغاء جميع الأدوية والإجراءات في المرضى في المستشفى.

الحصول على عينتين من الملتحمة كما هو موضح في 6.3.1 ، لأن قد تكون نتائج الاستنبات مفيدة في تحديد مصدر تلوث القرنية (يتم استخدام عينة واحدة في حالة الاشتباه في وجود عدوى فطرية).

في حالة الاشتباه في وجود عدوى فيروسية ، يتم وضع إفرازات الملتحمة والمواد التي تم الحصول عليها عن طريق الكشط في وسط نقل خاص للفيروسات.

يتم إجراء التخدير ، كما هو مبين في البند 6.3.1.

اجمع من 3-5 قصاصات بالطريقة الموضحة في الفقرة 6.3.1.

يتم وضع المادة التي تم جمعها في أنبوب صغير (5 مل) معقم يمكن التخلص منه مع غطاء لولبي أو أنبوب زجاجي معقم بسدادة مطاطية مملوءة بالوسيط.

قم بإعداد 2-3 مسحات على شريحة زجاجية ، وبعد التجفيف ، قم بإصلاحها كما هو موضح في الفقرة 6.3.1.

في الحاليتم إرسال جميع المواد إلى المختبر.

6.3.3. التهاب باطن المقلة الجرثومي. عينة سائلة الجسم الزجاجييتم جمع (1-2 مل) عن طريق شفط إبرة دقيقة ويتم أخذ عينة أثناء استئصال الزجاجية.

بعد ذلك ، قم بما يلي:

بعد إزالة الإبرة من المحقنة ، توضع المحتويات في حاوية معقمة يمكن التخلص منها بغطاء لولبي أو أنبوب اختبار مغلق بإحكام بسدادة مطاطية ؛

يمكن ترك عينة من المادة في المحقنة ، وإزالة الهواء وإزالة الإبرة ، وإغلاق المحقنة بسدادة مطاطية معقمة ؛

جمع عينة من الملتحمة ، كما هو موضح في الفقرة 6.3.1 ؛

كل المواد في الحالإرسالها إلى المختبر.

6.3.4. التهاب النسيج الخلوي. يعالج الجلد بكحول إيثيلي 70٪ و 1-2٪ محلول يود أو يودوفورم أو أي مطهر متاح آخر معتمد للاستخدام بالطريقة الموصوفة.

في حالة عدم وجود جرح مفتوح ، يتم ثقب الجفن العلوي أو السفلي لتجميع المادة.

في حالة وجود جرح مفتوح ، يتم جمع عينة من مادة قيحية باستخدام حقنة بإبرة.

تحضير اللطاخات على شريحة زجاجية كما هو موضح في الفقرة 6.3.1.

يتم نقل المواد التي تم جمعها إلى حاوية نقل بها وسائط للأكياس اللاهوائية أو تركها في محقنة يتم إغلاقها بسدادة بعد إزالة الهواء منها وإزالة الإبرة.

جمع المواد والمسحات في الحالإرسالها إلى المختبر.

6.3.5. التهاب النسيج الخلوي المداري. جمع الشفط من المنطقة وفقًا للطريقة الموضحة سابقًا في الفقرة 6.3.2.

اجمع عينة من الملتحمة وحضر مسحات على شريحة زجاجية ، كما في الفقرة 6.3.1.

للتسليم إلى المختبر ، استخدم المواد الموضحة في الفقرة 6.3.3.

اجمع عينات الدم من المريض وفقًا للطريقة الموضحة في الفقرة 6.1. عينات الدم ، يتم نقل جميع المواد التي تم جمعها إلى المختبر.

6.3.6. التهاب الغدة الدمعية (dacryadenitis).

يتم جمع المحتويات القيحية باستخدام مسبار المسحة ، كما في الفقرة 6.3.1.

لا تستخدم طريقة الشفط بإبرة حتى لا تعطل سلامة الغدة الدمعية.

يتم نقل مسبار المسحة والشرائح الزجاجية ذات اللطاخات إلى المختبر.

6.3.7. التهاب الكيس الدمعي (التهاب كيس الدمع). احصل على عينة من الملتحمة كما في الفقرة 6.3.1.

التدليك والضغط على الكيس الدمعي للحصول على عينة من الإفرازات للزراعة وتحضير المسحات ، أو باستخدام طريقة أخرى ، قم بجمع الإفرازات باستخدام حقنة وإبرة.

ضع عينة الإفرازات التي تم جمعها في حاويات نقل كما هو موضح سابقًا وقم بتسليمها إلى المختبر.

6.3.8. التهاب القناة. اضغط على الجفن من الداخل للحصول على صديد.

يتم تنفيذ المزيد من العمل وفقًا للطرق الموضحة سابقًا في هذا القسم.

إذا كان هناك قسم متخصص (عيادة) في المنظمة الطبية والوقائية ، يتم عمل جميع المحاصيل بجانب سرير المريض على وسائط مغذية يتم الحصول عليها في المختبر. يتم نقل المادة الملقحة مع اللطاخات المحضرة إلى المختبر.

6.4. اختبارات العمليات المعدية والتهابات الأذن

6.4.1. في حالة تلف الأذن الخارجية ، يتم معالجة الجلد بنسبة 70٪ كحول ، يليه الغسل بمحلول ملحي معقم. يتم جمع التفريغ من البؤرة على مسحة مسبار معقمة يمكن التخلص منها من درنة أو أنابيب اختبار مع وسيط نقل ، أو على مسحة مثبتة في أنبوب زجاجي معقم ، مغلق بسدادة ، مع أو بدون وسيط خاص. يتم وضع المسحة في أنبوب اختبار وتسليمها إلى المختبر.

6.4.2. في حالة حدوث تلف في الأذن الوسطى والداخلية ، يتم جمع الثقوب والمواد الأخرى التي تم الحصول عليها أثناء العملية. يتم تسليم النقاط إلى المختبر في محقنة مغلقة بهواء تم إزالته مسبقًا. عينات الأنسجة - في حاوية نقل بوسط لاهوائي معتمد للاستخدام لهذه الأغراض في الاتحاد الروسي وفقًا للإجراء المتبع ، أو في حاوية معقمة يمكن التخلص منها بغطاء لولبي. من الممكن استخدام أنبوب زجاجي معقم مغلق بسدادة مطاطية معقمة.

6.4.3. يتم إجراء بزل طبلة الأذن من أجل التشخيص الميكروبيولوجي لعدوى الأذن الوسطى فقط في الحالات التي لا يستجيب فيها المريض للعلاج السابق أو مع التهاب الأذن الوسطى النزلي حتى في حالة عدم وجود إفرازات في الدم البارز (البذر من البلعوم الأنفي إيجابي في أقل من 90٪ من الحالات).

للحصول على عينة ، يتم تنظيف القناة الخارجية بمسحة مبللة بنسبة 70 ٪ من الإيثانول ، تليها المعالجة بمحلول ملحي معقم.

باستخدام حقنة ، يتم جمع السائل من تجويف الطبلي. يتم تسليم العينة إلى المختبر في حاوية معقمة يمكن التخلص منها بغطاء لولبي أو في محقنة مغلقة مع الهواء الذي تم إزالته مسبقًا.

في حالة تلف طبلة الأذن ، يتم جمع المادة بمسبار مسحة باستخدام مرآة. يتم وضع المسحة في أنبوب اختبار معقم يمكن التخلص منه (درنة) أو حاوية بها وسيلة نقل (يُسمح باستخدام أنبوب زجاجي معقم مع أو بدون وسيط) ، ويتم تسليمها إلى المختبر بهذا الشكل.

6.5. اختبارات العمليات المعدية والتهابات الجهاز التنفسي

6.5.1. الجهاز التنفسي العلوي. إذا كان المريض يشتبه في إصابته بالدفتيريا ، والسعال الديكي ، والكلاميديا ​​، وداء الميكوبلازما ، وداء الفيلقيات ، والسيلان ، يتم إبلاغ عمال المختبر قبل تسليم العينة حتى يستعدوا لتحليل هذا النوع من المواد.

6.5.1.1. يتم جمع عينة من الأغشية المخاطية للأجزاء الأمامية من تجويف الأنف باستخدام مسبار مسحة معقم مركب في أنبوب معقم يمكن التخلص منه (أنبوب) أو مركب بشكل خاص في أنبوب زجاجي معقم:

قم بإزالة المسحة من أنبوب الاختبار ، وأدخلها في فتحة الأنف اليمنى وقم بتدوير المادة من أجنحة الأنف والزاوية العلوية من فتحة الأنف ؛

كرر التلاعب في فتحة الأنف اليسرى ؛

يتم وضع المسحة في أنبوب اختبار وتسليمها إلى المختبر.

تعتبر العينات التي يتم الحصول عليها بهذه الطريقة مفيدة في تحديد نقل المكورات العنقودية الذهبية في العاملين الطبيين ، ووجود مسببات العدوى في المستشفيات ، وكذلك لتوصيف اضطرابات خلل التنسج في الأغشية المخاطية في الجهاز التنفسي العلوي أثناء الفحص السريري والميكروبيولوجي الشامل للمرضى أجريت في المختبرات العلمية والعملية.

إذا كانت هناك بؤر للالتهاب أو التقرح في تجويف الأنف ، يتم استخدام مسحة منفصلة لجمع المواد من البؤر (البؤر).

6.5.1.2. يتم جمع الرشاشات من البلعوم الأنفي لتحديد نقل المكورات العقدية المقيحة ، والمكورات السحائية ، ومسببات الأمراض من الدفتيريا والسعال الديكي ، وكذلك عند إجراء الدراسات الوبائية لمقاومة مضادات الميكروبات للجرثومة الرئوية والإنفلونزا:

مادة شفط من البلعوم الأنفي.

نقل المادة إلى حاوية معقمة يمكن التخلص منها بغطاء لولبي أو أنبوب معقم خاص مع سدادة سليلوز قابلة للنفاذ بالغاز أو شاش قطني ، مع الحرص على عدم نقعها بعينة من المواد السريرية.

6.5.1.3. مسحة من البلعوم الأنفي. يتم جمع المواد لتحديد نقل المكورات السحائية وتشخيص السعال الديكي.

بعناية مع حركات دورانية على طول الممر الأنفي السفلي ، يتم إدخال سدادة قطنية أو فسكوزي أو مسبار ألجينات الكالسيوم بالتناوب في البلعوم الأنفي في البلعوم الأنفي. في الوقت نفسه ، يتم ضغط أجنحة الأنف على المسحة والحاجز الأنفي للتلامس الوثيق مع الغشاء المخاطي.

يتم وضع المسحة في أنبوب معقم وتسليمها إلى المختبر.

6.5.1.4. يستخدم غسول الأنف لتحديد وجود ليس فقط عدوى بكتيرية ، ولكن أيضًا عدوى فيروسية في الغالب.

حذر المريض من البلع أثناء العملية.

يتم وضع رأس المريض في وضع الرجوع للخلف بزاوية 70 درجة تقريبًا ، ويتم حقن 5 مل من المحلول الملحي المعقم في كل منخر ، ويجب أن يكون المريض في هذا الوضع لمدة 3-5 ثوانٍ.

لجمع المادة ، يتم إنزال رأس المريض إلى الأمام بحيث يصب السائل من فتحتي الأنف في وعاء معقم يمكن التخلص منه أو يتم شفط السائل عن طريق إدخال تصريف مطاطي في كل منخر.

ضع كمية متساوية من الغسيل في حاوية وسط نقل الفيروسات أو قم بتوصيل هذا الجزء في حاوية معقمة يمكن التخلص منها.

6.5.1.5. ثقب الجيوب الأنفية. باستخدام تقنية الشفط عن طريق الحقن ، يحصل طبيب أو أخصائي أنف وأذن وحنجرة مدرب خصيصًا على المواد من الفك العلوي الجبهي أو الجيوب الأنفية الأخرى. توضع محتويات المحقنة في وعاء به وسيلة نقل اللاهوائية أو في أنبوب معقم بوسط ثيوجليكول. يمكنك ترك المادة في المحقنة ، وبعد إغلاقها بسدادة مطاطية معقمة ، قم بتسليمها إلى المختبر.

6.5.1.6. الحصول على عينة من الغشاء المخاطي للبلعوم (البلعوم).

لا يجوز جمع المواد من البلعوم المصاب بالتهاب لسان المزمار ، حيث يمكن أن يؤدي الإجراء إلى انسداد تنفسي خطير.

عند أخذ عينات من الغشاء المخاطي للبلعوم (البلعوم) ، لا تلمس الأغشية المخاطية في الخدين ، واللسان ، واللثة ، والشفتين بمسحة ، ولا تجمع اللعاب ، لأن هذه المادة تميز الأغشية المخاطية للتجويف الفموي ، أي ، الجهاز الهضمي العلوي.

يتم أخذ مسحة من البلعوم (البلعوم) على معدة فارغة أو بعد 3-4 ساعات من تناول الوجبة. قبل أخذ العينة ، يجب على المريض شطف فمه بالماء المغلي الدافئ.

للحصول على عينة ، يتم استخدام ملعقة أو مسحة معقمة: يتم إزالة مسحة الفسكوز من أنبوب اختبار معقم يمكن التخلص منه (أنبوب) أو يتم استخدام مسحة محضرة في المختبر ، مثبتة في أنبوب اختبار زجاجي معقم. يفضل استخدام مسبار مسحة برأس فسكوزي لأنه يمتص الفسكوز سائلًا أقل ومواد أكثر خلوية.

بيد واحدة يتم ضغط لسان المريض بملعقة معقمة.

يتم جمع المواد باليد الأخرى ، بالتناوب معالجة اللوزتين اليمنى ، القوس الحنكي الأيمن ، اللوزتين اليسرى ، القوس الحنكي الأيسر ، اللهاة مع سدادة ، على مستوى اللهاة ، يتم لمس الجدار الخلفي للبلعوم حشا.

تعتبر العينات التي يتم الحصول عليها بهذه الطريقة مفيدة لتحديد وجود العامل المسبب لعدوى المستشفيات ، وكذلك لتوصيف اضطرابات خلل التنسج في الأغشية المخاطية في الجهاز التنفسي العلوي أثناء الفحص السريري والميكروبيولوجي المناعي الشامل للمرضى الذي يتم إجراؤه في المختبرات العلمية والعملية. .

في حالة وجود بؤر التهاب أو تقرح على الغشاء المخاطي ، فإنهم يهتمون بشكل خاص بجمع العينات بالإضافة إلى جمع المواد من البؤر باستخدام مسحة منفصلة.

توضع المسحة في أنبوب زجاجي معقم يمكن التخلص منه ويتم تسليمه إلى المختبر.

6.5.1.7. في حالة الاشتباه بالدفتيريا ، يتم إبلاغ عمال المختبر بالإشارة إلى التشخيص في الإحالة.

في حالات العمليات المرضية في الجهاز التنفسي ، يتم جمع المواد في نفس الوقت من الأغشية المخاطية للبلعوم الأنفي والبلعوم وفقًا للطرق المقدمة سابقًا.

في حالة الاشتباه في وجود شكل جلدي من الخناق ، يتم جمع المواد من الجلد ، وكذلك من الأغشية المخاطية للبلعوم (البلعوم) والبلعوم الأنفي ، ويتم تسليم جميع العينات إلى المختبر.

6.5.2. الجهاز التنفسي السفلي. التشخيص الميكروبيولوجي العمليات الالتهابيةفي الجهاز التنفسي السفلي يمثل صعوبات خطيرة ، tk. أثناء الجمع ، قد تكون العينة ملوثة بالكائنات الحية الدقيقة التي تستعمر الجهاز التنفسي العلوي. هذا الموضع البيئي مزروع بكثرة بالميكروبات الانتهازية ، خاصة في وجود دسباقتريوز (النوعي - تكوين الأنواع و / أو الكمي - تركيز الأنواع الموجودة في CFU / مل في مجموعة ضعيفة و / أو منقوصة مناعياً).

لهذا السبب ، يتم جمع عينات من المواد من الجهاز التنفسي السفلي بعناية خاصة للحصول على معلومات صحيحة حول العامل المسبب للمرض (العوامل). عند استخدام الطرق الغازية لجمع عينة (إذا لم يحدث ذلك أثناء الجراحة) ، فإن الأدوات المستخدمة تمر عبر الجهاز التنفسي العلوي ، وهناك إمكانية حقيقية لبذر أماكن أعمق بالكائنات الحية الدقيقة - سكان الجهاز التنفسي العلوي.

6.5.2.1. اللعاب.

بلغم مفصول بشكل فضفاض (مقشع)- يفضل في الصباح.

قبل أخذ العينة يجب على المريض ، إن أمكن ، تنظيف أسنانه وغسل فمه وحنجرته بالماء المغلي الدافئ ، وإذا كان المريض غير قادر على القيام بذلك بنفسه ، فيتم إجراء مرحاض تجويفه بواسطة العاملين الطبيين. .

حذر المريض من جمع إفرازات اللعاب أو البلعوم الأنفي في الحاوية.

يتم جمع عينة من البلغم نتيجة السعال العميق في حاوية خاصة معقمة يمكن التخلص منها مع غطاء لولبي أو في وعاء زجاجي معقم مُعد خصيصًا.

يتم إرسال عينة البلغم إلى المختبر.

البلغم المستحث (يُنصح به في المقام الأول عند الاشتباه في وجود المتفطرة السلية والمتكيسة الرئوية yiroveci)- يفضل في الصباح.

قبل جمع العينة ، يجب على المريض ، إن أمكن ، تنظيف أسنانه وغسل الفم والحلق بالماء الدافئ المغلي ؛ إذا كان المريض غير قادر على القيام بذلك بنفسه ، يتم إجراء مرحاض تجويف الفم من قبل الطاقم الطبي.

قبل الإجراء ، بلل نظيفة فرشاة الأسنانالماء المغلي الدافئ وصرفه على الغشاء المخاطي لكل من الخدين واللسان واللثة.

اشطف فم المريض بفاعلية بالماء المغلي الدافئ.

باستخدام جهاز الاستنشاق ، يعطى المريض لابتلاع 20-30 مل من 3-10٪ محلول ملحي معقم.

جمع البلغم المستحث في حاوية خاصة معقمة يمكن التخلص منها بغطاء لولبي أو في وعاء زجاجي معقم معدة بشكل مناسب.

أرسل العينة إلى المختبر.

بالتزامن مع عينة البلغم ، يجب إرسال عينة بلعومية (بلعومية) إلى المختبر ، وجمعها بعد المرحاض من تجويف الفم وقبل جمع البلغم المنفصل بحرية (البلغم) أو المستحث.

6.5.2.2. ثقب القصبة الهوائية وشفط القصبة الهوائية. يتم استعمار فغر القصبة الهوائية بواسطة الكائنات الحية الدقيقة في وقت مبكر يصل إلى 24 ساعة بعد تنبيب المريض ، ونتيجة لذلك تكون نتائج دراسة المزرعة ذات أهمية سريرية منخفضة. بالنظر إلى ما سبق ، يجب مقارنة نتائج الثقافة من المرضى المنبوبين باستمرار مع النتائج السريرية (على سبيل المثال ، الحمى أو تسلل الأشعة السينية).

يتم جمع عينات من غسيل الشعب الهوائية أو غسل القصبات الهوائية ، إن أمكن ، قبل أخذ عينات الكشط أو الخزعة. والقاعدة التي تمليها ضرورة تجنب الدم الزائد في السائل الناتج ، لأن. يمكن أن يغير الدم تركيز المكونات الخلوية وغير الخلوية للعينة ويؤثر على نتيجة التحليل الميكروبيولوجي.

يتم جمع عينة الشفط في حاوية معقمة يمكن التخلص منها بغطاء لولبي أو في حاوية زجاجية معقمة مركبة بشكل صحيح ، أو في أنبوب زجاجي معقم يمكن التخلص منه بسدادة ، أو يتم تسليمها إلى المختبر في محقنة مغلقة مع إزالة الهواء.

6.5.2.3. العينات التي تم الحصول عليها باستخدام منظار القصبات. غسل القصبات الهوائية (العينة المختارة) ، غسيل الشعب الهوائية (حساسية منخفضة في تشخيص الالتهاب الرئوي) ، كشط القصبات (أكثر أهمية من الغسل) ، عينات الخزعة عبر القصبة يتم الحصول عليها عن طريق إدخال منظار القصبات عبر الأنف أو عبر الفم في مريض غير تحت التنبيب أو من خلال أنبوب القصبة الهوائية في مريض منبب.

للحصول على عينة من تدفق الشعب الهوائية أو غسل القصبات الهوائية:

حقنها بحقنة من خلال قناة الخزعة في منظار القصبات في أجزاء منفصلة من محلول ملحي معقم غير جراثيم (رسمي) (الحجم الكلي من 5-20 إلى 100 مل) ؛

قبل إدخال الجزء التالي من المحلول الملحي ، اسحب بعناية بالجزء الذي تم إدخاله من المحقنة في حاوية معقمة يمكن التخلص منها بغطاء لولبي أو في أنبوب معقم يمكن التخلص منه أو أنبوب زجاجي بسدادة ، أو اتركه في محقنة مغلقة ، بعد إزالة الهواء من (عادة ما يكون 50-70٪ من المحلول الملحي في حالة غسيل) ؛

يتم جمع كل جزء ماص في وعاء منفصل ؛

في نهاية الإجراء ، يتم الجمع بين العينات التي تم الحصول عليها من نفس المنطقة. عينات من مواقع مختلفة (على سبيل المثال right الفص العلوييجب توصيل الرئة والفص السفلي الأيمن معًا فقط بعد استشارة الطبيب المعالج ؛

في الاتجاه يشير إلى الحجم الكلي للمحلول الملحي المحقون.

للحصول على عينة كشط الشعب الهوائية:

من خلال قناة خزعة منظار القصبات ، يتم إدخال قسطرة مزدوجة تلسكوبية ذات طرف بعيد معالج بالبولي إيثيلين جلايكول (أو أي كاشف مناسب آخر) لمنع تلوث العينة ؛

جمع المواد في حاوية معقمة يمكن التخلص منها بغطاء لولبي أو في حاوية نقل بوسط لاهوائي أو في أنبوب معقم بوسط ثيوجليكول ، مغلق بإحكام بسدادة مطاطية معقمة ؛

تسليم المواد إلى المختبر.

للحصول على خزعة عبر القصبات ، يتم جمع عينة من خلال قناة الخزعة في منظار القصبات ، وبعد وضعها في حاوية معقمة يمكن التخلص منها بغطاء لولبي بكمية صغيرة (1-2 مل) من محلول ملحي غير جراثيم (رسمي) أو في أنبوب اختبار بوسط ثيوجليكول مغلق بإحكام بسدادة مطاطية ، يتم نقله إلى المختبرات

6.5.2.4. عينات نضح الرئة. لجمع عينة ، يتم إدخال إبرة من خلال القص في ارتشاح الرئة تحت سيطرة ماسح التصوير المقطعي المحوسب. يتم سحب المادة من بؤرة الالتهاب. إذا كان هناك تسلل كبير أو كان هناك العديد ، فمن الضروري الحصول على عدة عينات من البؤر المقابلة أو عدة عينات من آفة واحدة كبيرة. يتم نقل المادة إلى المختبر في حاوية نقل بها وسط اللاهوائية أو في أنبوب زجاجي بوسط ثيوجليكول ، أو في حاوية لولبية يمكن التخلص منها.

6.5.2.5. عينات خزعة الرئة. إذا أمكن ، يتم الحصول على قطع من الأنسجة بحجم 1-3 سم ، وإذا كانت الآفة كبيرة أو متعددة ، يتم جمع عدة عينات. توضع العينة في حاوية معقمة يمكن التخلص منها بغطاء لولبي أو في حاوية نقل بوسط لاهوائي ، أو في حاوية (أنبوب اختبار) بوسط ثيوجليكول ، مغلق بسدادة مطاطية معقمة.

6.6. اختبارات العمليات المعدية والتهابات الجهاز البولي التناسلي

6.6.1. عينات البول.

6.6.1.1. القواعد العامة لأخذ العينات:

لا يجوز جمع البول من أغطية السرير أو من المبولة ؛

لتحليل البول أثناء التبول الطبيعي ، استخدم متوسط ​​كمية الصباح ؛

قبل جمع العينة ، من الضروري غسل الأعضاء التناسلية الخارجية والمنطقة جيدًا فتحة الشرجماء مغلي دافئ يجب إيلاء اهتمام خاص لمعالجة فتح مجرى البول عند الرجال (دهليز المهبل - عند النساء) لضمان عدم تلوث العينة بالميكروبات أثناء العملية ؛

لا يجوز استخدام المطهرات في المعالجة بسبب. إذا دخلوا العينة ، فيمكنهم منع نمو الكائنات الحية الدقيقة ؛

يتم نقل العينة إلى المختبر في موعد لا يتجاوز ساعتين من لحظة جمعها ؛

لجمع العينات وتسليمها إلى المختبر ، يتم استخدام حاويات معقمة يمكن التخلص منها بغطاء أو أنابيب لولبية (يمكن استخدام أنابيب زجاجية معقمة مُثبتة خصيصًا مع سدادة سليولوز أو شاش قطني منفذ للغاز ، ولكن يجب الحرص بشكل خاص على عدم القيام بذلك. نقع السدادة) ؛

يتم تسليم عينات الشفط التي تم الحصول عليها باستخدام تقنية البزل فوق العانة للمثانة إلى المختبر في حاوية نقل مع وسيط خاص للأنسجة اللاهوائية أو في محقنة مغلقة بدون إبرة ؛

في حالة الاشتباه في وجود عدوى فيروسية ، يتم تسليم العينات إلى المختبر في حاوية معقمة يمكن التخلص منها موضوعة على الثلج المذاب (لا يُسمح بالثلج الجاف!) ؛

يتم إجراء أي إجراء للحصول على عينة باستخدام قسطرة (خاصة عند النساء) مع مراعاة قواعد التعقيم بعناية لمنع تلوث إضافي للمريض أثناء إدخال القسطرة ؛

للبحث الميكروبيولوجي لا يسمح باستخدام عينة من م

6.6.1.2. جمع عينات البول من النساء أثناء التبول الطبيعي.

استخدم الجزء الأوسط ، لأن. يجب أن يزيل الممر الأول للبول التعايش ربما في مجرى البول. يجب أن تكون العينة التي يتم جمعها في الممرات التالية خالية من التلوث. موثوقية النتائج الإيجابية لمثل هذه المادة هي 80٪ عند جمع عينة واحدة ، و 90٪ عند جمع عينتين متتاليتين ، و 100٪ عند ثلاث عينات ، إذا أعطت جميع العينات نفس النتائج.

على العامل الصحي الذي يجمع العينة أن يغسل يديه بالماء والصابون ويشطف بالماء ويجفف. إذا تم جمع العينة من قبل المريض نفسه ، فسيتم شرحه بالتفصيل كيف يتم ذلك ، مع مراعاة التحضير الموضح أعلاه ، وتحذيره مما يمكن أن يحدث إذا خالف القواعد:

اغسل فتحة مجرى البول ومنطقة دهليز المهبل جيدًا ، وكذلك منطقة العجان والشرج بالماء والصابون أو الصابون السائل ، وشطفها بالماء الدافئ المغلي ، وتجفيفها بقطعة قماش شاش معقم ؛

يجب إغلاق فتحة المهبل بقطعة قطن معقمة ؛

إبقاء الشفرين الخارجيين على مسافة من بعضهما البعض أثناء التبول ؛

إفراغ كمية صغيرة من البول في وعاء خاص للتخلص منها دون توقف التبول ؛

جمع كمية متوسطة من البول (10-20 مل) في حاوية خاصة يمكن التخلص منها بغطاء لولبي أو وعاء زجاجي معقم تم تجميعه خصيصًا في المختبر.

6.6.1.3. جمع عينات البول من الرجال أثناء التبول الطبيعي.

في الرجال ، هناك حاجة إلى جزء واحد من البول للفحص الميكروبيولوجي ، وذلك بسبب. هم أقل عرضة للتلوث من النساء.

يجب على الشخص الذي يجمع العينة أن يغسل يديه بالصابون ويشطف بالماء ويجفف. إذا قام المريض بجمع العينات بنفسه ، فيجب توضيح كيفية القيام بذلك بالتفصيل ، مع مراعاة التحضير التالي ، والتحذير مما يمكن أن يحدث في حالة انتهاك القواعد:
[بريد إلكتروني محمي]، سنجد حلا.

يُسمح بإجراء دراسات تفاعل البوليميراز المتسلسل على أساس المعامل الموجودة ، والتي تخضع للتنظيم في مختبر مناطق العمل المستقلة أو المنفصلة كجزء من المباني الوظيفية الأخرى ، والتي تتوافق مع مراحل تحليل تفاعل البوليميراز المتسلسل.

يجب أن يتضمن مختبر تفاعل البوليميراز المتسلسل الحد الأدنى التالي من مجموعة مناطق العمل:

• استقبال المواد وتسجيلها وتحليلها ومعالجتها الأولية ؛
• عزل DNA / RNA ؛
• تحضير مخاليط التفاعل و PCR ؛
• الكشف عن منتجات التضخيم عن طريق الرحلان الكهربائي أو HyFA.

من المهم ملاحظة أنه في حالة استخدام الطريقة ، ليست هناك حاجة لاكتشاف منتجات التضخيم عن طريق الرحلان الكهربي. لذلك ، لا يمكن تخصيص منطقة العمل في المختبر للرحلان الكهربي.

في مختبرات PCR ، من الضروري أيضًا توفير أماكن إضافية: أرشيف (لوثائق المحاسبة) ، غرفة الموظفين ، مكتب المدير ، غرف تغيير الملابس للموظفين ، غرفة الطعام ، غرف الصرف الصحي (المرحاض) ، غرف المرافق (مستودع).

في المثاليمن الضروري وجود غرفة أوتوكلاف لتطهير مواد الاختبار. يمكن مشاركتها مع الأقسام الأخرى في المؤسسة ، وفقًا لمتطلبات الأمن البيولوجي.

يجب أن تكون أماكن أداء العمل في مراحل تحليل PCR محاصرة (مربعات بها صناديق مسبقة). في مجال الاستقبال والتسجيل والتحليل والمعالجة الأولية للموادإجراء استلام المواد ، وتحضير العينة (الفرز ، ووضع العلامات ، والطرد المركزي ، وما إلى ذلك) ، والتخزين والتعطيل الأولي لمخلفات المواد الحيوية بالمطهرات. تقع منطقة استلام المواد وتسجيلها وتحليلها ومعالجتها الأولية في غرفة استقبال المواد أو في غرفة مغلقة منفصلة. هنا يمكنك أيضًا تلقي ومعالجة عينات للبحث عن طريق طرق أخرى (علم المناعة ، على سبيل المثال) ، بشرط تخصيص مكان عمل منفصل مجهز لتحليل تفاعل البوليميراز المتسلسل.

منطقة استخراج الحمض النووي / الحمض النووي الريبيوضعها في غرفة منفصلة. عند تنظيم مختبر PCR على أساس مختبر موجود ، يُسمح بعزل DNA / RNA في الغرف التي يتم فيها إجراء أنواع أخرى من الأبحاث ، باستثناء أعمال الهندسة الوراثية. في هذه الحالة ، يتم تنظيم منطقة عمل لاستخراج الحمض النووي / الحمض النووي الريبي في الغرفة ، حيث يوجد صندوق PCR أو صندوق أمان بيولوجي. لا يُسمح بأي عمل آخر في صندوق PCR لعزل DNA / RNA!

في مجال تحضير مخاليط التفاعل و PCRتحضير خليط PCR ، وإضافة تحضيرات DNA / RNA أو cDNA المعزولة إلى أنبوب PCR ، والنسخ العكسي لـ RNA وتضخيم DNA أو cDNA. يجب أن تكون غرفة تحضير مخاليط التفاعل و PCR منفصلة. يتم تحضير مخاليط تفاعل البوليميراز المتسلسل في صندوق PCR.

إذا لزم الأمر ، يمكن دمج مرحلة عزل DNA / RNA في نفس الغرفة مع مرحلة تحضير مخاليط التفاعل و PCR ، إذا كانت تحتوي على صناديق PCR منفصلة - لتحضير مخاليط تفاعل PCR ولعزل DNA / RNA.

منطقة للكشف عن منتجات التضخيمتوضع في غرفة منفصلة ، إذا أمكن مجهزة بصندوق PCR. إذا كان من الضروري استخدام طريقة الفصل الكهربائي وطريقة تحليل التهجين في نفس الوقت للكشف عن منتجات التضخيم ، فيجب تخصيص منطقة عمل منفصلة في غرفة الكشف لتحليل التهجين. في هذه الحالة ، يتم تمييز المعدات والملحقات الخاصة بكل نوع من أنواع الكشف لكل منطقة. لا يجوز استخدام الماصات والأطباق المعدة للتحليل الكهربائي لتحليل التهجين.

يجب أن تضمن قرارات التخطيط ووضع المعدات تدفق حركة المواد قيد الدراسة. يجب استبعاد تبادل الهواء بين الغرفة للكشف عن منتجات التضخيم والغرف الأخرى تمامًا.

سيتم تجهيز مختبر PCR بالسباكة والصرف الصحي والكهرباء والتدفئة. جميع غرف مختبر PCR مزودة بإضاءة طبيعية وصناعية كافية.

أثناء إنشاء مختبرات تفاعل البوليميراز المتسلسل الجديدة أو إعادة بناء مختبرات تفاعل البوليميراز المتسلسل الحالية ، تم تجهيز المباني بتهوية الإمداد والعادم أو العادم. يتحقق الاختلاف في ضغط الهواء في مباني مختبر PCR بسبب الاختلافات في معدل تبادل الهواء فيها. يجب أن يتوافق سعر الصرف الجوي مع القيم الواردة في الجدول:

إذا لزم الأمر ، يمكن تركيب مكيفات الهواء في مختبر PCR.

يتم تنفيذ الزخرفة الداخلية للمباني وفقًا لغرضها الوظيفي. يجب أن تكون أسطح الحوائط والأرضيات والسقوف في غرف المعامل ناعمة وخالية من الشقوق ومعالجتها بسهولة ومقاومة للمنظفات و المطهرات. يجب ألا تكون الأرضيات زلقة. يجب أن يحتوي أثاث المختبر على طلاء مقاوم للمنظفات والمطهرات. يجب ألا يحتوي سطح الطاولات على تشققات أو طبقات. يجب أن تكون مباني المختبر منيعة ضد القوارض والحشرات. مختبر تفاعل البوليميراز المتسلسل مزود بمعدات إطفاء حريق.

التهاب المسالك البولية

مادة للبحث كشط من مجرى البول أو قناة عنق الرحم ، إفراز البروستاتا ، رواسب البول. في الأطفال حديثي الولادة ، يتم استخدام كشط من ملتحمة العين وجدار البلعوم الخلفي كمواد للبحث. في الفتيات ، يتم استخدام تجريف من الفرج كمادة للبحث ، عند الأولاد - البول.

تحضير المريض ، وأخذ المواد البيولوجية وشروط نقله قبل 10 أيام من أخذ المادة للبحث ، من الضروري التوقف عن تناول أدوية العلاج الكيميائي إجراءات الشفاء.

ملامح أخذ المواد من مجرى البول

• قبل أخذ المادة ، ينصح المريض بالامتناع عن التبول لمدة 1.5-2 ساعة ؛
• مباشرة قبل أخذ المادة ، يجب معالجة الفتحة الخارجية للإحليل بمسحة مبللة بمحلول ملحي معقم ؛
• في حالة وجود إفرازات قيحية ، يوصى بتناول الكشط بعد 15-20 دقيقة من التبول ؛ في حالة عدم وجود إفرازات ، من الضروري تدليك مجرى البول باستخدام مسبار لأخذ المادة ؛
• في النساء ، قبل إدخال المسبار في مجرى البول ، يتم تدليكه على مفصل العانة ؛
• في مجرى البول عند النساء ، يتم إدخال المسبار على عمق 1.0-1.5 سم ، عند الرجال - 3-4 سم ، ثم يتم إجراء عدة حركات دورانية ؛ عند الأطفال ، يتم أخذ مواد البحث فقط من الفتحة الخارجية لمجرى البول ؛

ملامح أخذ المواد من قناة عنق الرحم

• قبل أخذ المادة ، من الضروري إزالة المخاط بقطعة قطن ثم معالجة عنق الرحم بمحلول ملحي معقم ؛
• يتم إدخال المسبار في قناة عنق الرحم على عمق 0.5-1.5 سم ؛
• في حالة وجود تآكل في قناة عنق الرحم ، يجب معالجتها بمحلول ملحي معقم ، ويجب أن تؤخذ المادة عند حدود الأنسجة السليمة والمتغيرة ؛
• عند إزالة المسبار ، من الضروري استبعاد ملامسته تمامًا لجدران المهبل ؛

بعد أخذ المادة ، يتم إنزال المسبار في أنبوب الاختبار باستخدام وسيط نقل DNA-EXPRESS. بعد إدخال المسبار في وسيط النقل ، يتم تدويره عدة مرات ثم إزالته من الأنبوب. القارورة مغلقة وموسومة. إذا كان وقت نقل المادة البيولوجية من لحظة نقلها إلى لحظة تسليمها إلى المختبر أكثر من ساعتين ، فيجب تجميد الأنبوب عند درجة حرارة -20 درجة مئوية. حقيبة تبريد. يمكن تخزين المواد البيولوجية المجمدة لمدة لا تزيد عن أسبوعين.

ملامح اخذ سر غدة البروستاتا

قبل أخذ سر البروستاتا ، يتم علاج حشفة القضيب بقطعة قطن معقمة مبللة بمحلول ملحي. يتم أخذ سر البروستاتا بعد التدليك الأولي للبروستات من خلال المستقيم. يقوم الطبيب بعمل مساج بالضغط بعدة حركات قوية من القاعدة إلى الأعلى. ثم يخرج السر البروستاتي من الجزء الكهفي. يجب أن يتم نقل المواد البيولوجية فقط في كيس تبريد.

ملامح أخذ (جمع) البول

يتم جمع البول في الصباح على معدة فارغة بعد النوم أو في موعد لا يتجاوز 2-3 ساعات بعد آخر التبول. يستقر بول الصباح لمدة ساعة واحدة ، ثم يندمج بعناية ، ولم يتبق سوى الجزء السفلي - حوالي 10 مل. يتم سكب هذه البقايا في أنبوب طرد مركزي وطردها. ثم يتم تصريف المادة الطافية مرة أخرى ، ويتم نقل الراسب (بدون سائل) بواسطة مسبار إلى أنبوب PCR.

لا ينبغي تبريد البول أو تجميده حتى يتم الحصول على الرواسب.

ملامح أخذ المواد من جدار البلعوم الخلفي

يتم إدخال مسبار يمكن التخلص منه خلف الحنك الرخو في البلعوم الأنفي ويمر على طول الجدار البلعومي الخلفي. بعد أخذ المادة ، يتم إنزال المسبار في أنبوب الاختبار باستخدام وسيط نقل DNA-EXPRESS. بعد إدخال المسبار في وسيط النقل ، يتم تدويره عدة مرات ثم إزالته من الأنبوب. القارورة مغلقة وموسومة. إذا كان وقت نقل المادة البيولوجية من لحظة نقلها إلى لحظة تسليمها إلى المختبر أكثر من ساعتين ، فيجب تجميد الأنبوب عند -200 درجة مئوية. يجب أن يتم نقل المواد البيولوجية فقط في كيس تبريد. يمكن تخزين المواد البيولوجية المجمدة لمدة لا تزيد عن أسبوعين.

ملامح أخذ المواد من ملتحمة العين

في حالة وجود إفراز صديدي وفير ، تتم إزالته بقطعة قطن معقمة مبللة بمحلول ملحي. يتم أخذ الكشط من السطح الداخلي للجفن السفلي عن طريق التحرك نحو الجزء الداخلي للعين. عند إجراء الكشط ، من الضروري إمساك الجفن بيديك حتى لا تلمس الرموش المسبار عند الوميض.

بعد أخذ المادة ، يتم إنزال المسبار في أنبوب الاختبار باستخدام وسيط نقل DNA-EXPRESS. بعد إدخال المسبار في وسيط النقل ، يتم تدويره عدة مرات ثم إزالته من الأنبوب. القارورة مغلقة بإحكام. إذا كان وقت نقل المادة البيولوجية من لحظة نقلها إلى لحظة تسليمها إلى المختبر أكثر من ساعتين ، فيجب تجميد الأنبوب عند -200 درجة مئوية. يجب أن يتم نقل المواد البيولوجية فقط في كيس تبريد. يمكن تخزين المواد البيولوجية المجمدة لمدة لا تزيد عن أسبوعين.

التهاب المفاصل في المسالك البولية

مادة للبحث عن انفصال مجرى البول ، المهبل ، قناة عنق الرحم ، البول (طرد مركزي لأجزاء الصباح الأولى والمتوسطة) ، إفراز البروستاتا ، السائل المنوي.

ملامح أخذ المواد من المهبل

يجب أخذ المادة قبل الفحص اليدوي. قبل التلاعب ، يمكن ترطيب المرآة بالماء الساخن ؛ استخدام المطهرات لمعالجة المرآة هو بطلان. يتم جمع الإفرازات المهبلية باستخدام مسبار معقم يمكن التخلص منه من الجزء الخلفي السفلي الخلفي أو من مناطق متغيرة مرضيًا من الغشاء المخاطي وتوضع في أنبوب اختبار مع وسيط نقل DNA-EXTPESS. في الفتيات ، يتم أخذ المادة من الغشاء المخاطي في دهليز المهبل ، وفي بعض الحالات - من الجزء الخلفي من المهبل من خلال حلقات غشاء البكارة. بعد إدخال المسبار في وسيط النقل ، يتم تدويره عدة مرات ثم إزالته من الأنبوب. القارورة مغلقة وموسومة. إذا كان وقت نقل المادة البيولوجية من لحظة نقلها إلى لحظة تسليمها إلى المختبر أكثر من ساعتين ، فيجب تجميد الأنبوب عند -200 درجة مئوية. يجب أن يتم نقل المواد البيولوجية فقط في كيس تبريد. يمكن تخزين المواد البيولوجية المجمدة لمدة لا تزيد عن أسبوعين.

جونورهي

مادة للبحث عن انفصال مجرى البول ، قناة عنق الرحم ، إفراز البروستاتا ، رواسب البول.

تحضير المريض وأخذ المواد البيولوجية وشروط نقله انظر الكلاميديا ​​البولي التناسلي.

قبل 10 أيام من أخذ مادة الدراسة ، من الضروري التوقف عن تناول أدوية العلاج الكيميائي والإجراءات الطبية. يجب أن تؤخذ مواد البحث في النساء قبل الحيض أو بعد يوم أو يومين من نهايته. قبل أخذ المادة ، من الضروري الامتناع عن التبول لمدة 3-4 ساعات والجماع. يجب على النساء عشية الفحص عدم إجراء مرحاض الأعضاء التناسلية الخارجية والغسيل. يجب أن تكون مادة الاختبار خالية من شوائب الدم. لا ينبغي أن تؤخذ إفرازات مجرى البول المتدفقة بحرية للبحث. يجب أن يؤخذ سر البروستاتا فقط بعد نهاية المظاهر الحادة لالتهاب البروستاتا. مع مرض السيلان البطيء والمزمن ، من الضروري الاستفزاز قبل الدراسة.

طرق استفزاز السيلان:

• بيولوجي: إدخال لقاح الغونوفا (500 مليون جسم جرثومي) للبالغين مرة واحدة ، في العضل ، للأطفال فوق سن 3 سنوات - 100-200 مليون جسم جرثومي ؛ بالنسبة للأطفال دون سن 3 سنوات ، لا ينصح بإدخال لقاح الغونوفا ؛
• حراري: تطبيق لمدة 3 أيام من الإنفاذ الحراري بترتيب بطني - مهبلي - عجزي للأقطاب الكهربائية لمدة 30 ، 40 ، 50 دقيقة أو الحث الحراري لمدة 10 ، 15 ، 20 دقيقة ؛ من الأفضل أخذ المادة من مجرى البول وقناة عنق الرحم بعد ساعة واحدة من كل عملية إحماء ؛
• ميكانيكي: فرض غطاء معدني على عنق الرحم عند النساء لمدة 4 ساعات ، تدليك مجرى البول عند الرجال على البوجي لمدة 10 دقائق ؛
• الغذاء: استهلاك الأطعمة المالحة والحارة والكحول 24 ساعة قبل الدراسة.

يتم أخذ المواد بعد الاستفزاز وبعد 24-48-72 ساعة.

للحصول على النتائج الأكثر موثوقية ، من الضروري إجراء دراسات متكررة.

داء المثقبيات

مادة للبحث قابلة للانفصال عن مجرى البول (عند الرجال) ، المهبل ، إفراز البروستاتا.

تحضير المريض ، أخذ المواد البيولوجية وشروط نقله انظر الكلاميديا ​​البولي التناسلي ، الميكوبلازما البولي التناسلي.

داء السل (مواقع خارج الرئة)

مادة لأبحاث البول ، مسحات من قناة عنق الرحم ، مجرى البول.

تحضير المريض ، وأخذ المواد البيولوجية وشروط نقله قبل 10 أيام من أخذ المادة للبحث ، من الضروري التوقف عن تناول أدوية العلاج الكيميائي والإجراءات الطبية. انظر الكلاميديا ​​البولي التناسلي.

أمراض الجهاز التنفسي المصاحبة لها الميكوبلازما الرئوية

مادة لفحص مسحة البلعوم الأنفي.

ملامح أخذ مسحة من البلعوم الأنفي تؤخذ مسحة على معدة فارغة أو في موعد لا يتجاوز 2-4 ساعات بعد الأكل. عند أخذ المادة ، يلزم وجود إضاءة جيدة ، يجلس المريض مقابل مصدر الضوء ، ويتم الضغط على جذر اللسان بملعقة ، ويتم أخذ المادة بمسبار معقم ، دون لمس اللسان والغشاء المخاطي الشدق والأسنان ، و خفضت في أنبوب اختبار مع وسيلة نقل DNA-EXPRESS. بعد أخذ المادة ، يتم إنزال المسبار في أنبوب الاختبار باستخدام وسيط نقل DNA-EXPRESS. بعد إدخال المسبار في وسيط النقل ، يتم تدويره عدة مرات ثم إزالته من الأنبوب. الأنبوب مغلق. إذا كان وقت نقل المادة البيولوجية من لحظة نقلها إلى لحظة تسليمها إلى المختبر أكثر من ساعتين ، فيجب تجميد الأنبوب عند -200 درجة مئوية. يجب أن يتم نقل المواد البيولوجية فقط في كيس تبريد. يمكن تخزين المواد البيولوجية المجمدة لمدة لا تزيد عن أسبوعين.

أمراض الجهاز الهضمي (التهاب المعدة ، القرحة الهضميةالمعدة أو أو المناطق) مرتبط ب هيليكوباكتر بيلوري

مواد للبحث خزعات غار المعدة ، خزعات الاثني عشر ، خزعات اللثة ، مسحات من جيب اللثة.

ملامح أخذ خزعة المواد

يتم أخذ مادة الخزعة أثناء الفحص بالمنظار. قبل بدء العلاج بالبكتيريا الحلزونية البوابية ، يتم أخذ عينة من غار المعدة. عند مراقبة العلاج ، يتم أخذ عينة خزعة في موعد لا يتجاوز 4 أسابيع بعد العلاج المضاد للهيليكوباكتر من جسم المعدة. يتم إنزال عينة الخزعة المأخوذة في أنبوب اختبار جاف معقم (إبندورف) وتسليمها على الفور إلى المختبر. لتخزين أطول ، من الممكن تجميد مادة الخزعة المأخوذة عند درجة حرارة -20 0 درجة مئوية.

ملامح أخذ عينات خزعة من اللثة ومسحات من جيب اللثة واللعاب

يتم أخذ خزعة من اللثة ومسحات من جيب اللثة واللعاب من المرضى الذين لديهم تاريخ من أمراض الجهاز الهضمي في وجود التهاب اللثة وأمراض اللثة.

يتم إنزال عينة الخزعة المأخوذة في أنبوب اختبار جاف معقم (إبندورف) وتسليمها على الفور إلى المختبر. لتخزين أطول ، من الممكن تجميد مادة الخزعة المأخوذة عند درجة حرارة -20 0 درجة مئوية.

تُجمع المسحات من الجيب اللثوي في أنبوب اختبار معقم (إبندورف) بمحلول ملحي. في هذه الحالة ، يمكن تخزين أنابيب الاختبار في الثلاجة (+4 0 درجة مئوية - +6 0 درجة مئوية) لمدة لا تزيد عن 12 ساعة ، ويتم نقلها في كيس الثلاجة.

اصابات فيروسية

فيروس الهربس البسيط الثاني ؛ الفيروس المضخم. فيروس الورم الحليمي البشري 16، 18

المواد التي تم التحقيق فيها - المسحات

في عدوى الهربسمن الأفضل أخذ القصاصات من الآفات التناسلية (حويصلات ، قروح). في حالة عدم وجود آفات تناسلية ، يتم أخذ كشط من قناة عنق الرحم. عند تشخيص عدوى الفيروس المضخم للخلايا ، يمكن استخدام مسحة من جدار البلعوم الخلفي وكشط من المهبل وقناة الإحليل وعنق الرحم واللعاب والسائل الدماغي النخاعي للبحث. عند تشخيص عدوى فيروس الورم الحليمي البشري ، يتم أخذ مسحة من البلعوم الأنفي ، من ملتحمة العين ، وكشط من قناة عنق الرحم ، وعنق الرحم ، أي الأغشية المخاطية (ظهارة غير متقرنة).

أخذ المواد البيولوجية يجب أن يتم أخذ المواد البيولوجية ، إن أمكن ، خلال فترة تفاقم العدوى. انظر الكلاميديا ​​البولي التناسلي ، الميكوبلازما البولي التناسلي.

فيروس الهربس البسيط I ؛ فيروس الهربس البسيط الثاني ؛ فيروس الهربس البسيط السادس
الفيروس المضخم. فيروس ابشتاين بار

مادة التحقيق في الدم الأصلي.

تحضير المريض وأخذ المواد البيولوجية وشروط نقله. يُنصح بأخذ الدم لإجراء الأبحاث على معدة فارغة.

يؤخذ الدم الوريدي بكمية 1-1.5 مل في أنبوب اختبار معقم (إبندورف) بحجم 1.5 مل مع محلول EDTA. يمكن تخزين أنبوب اختبار به دم في الثلاجة (+4 0 درجة مئوية - +6 0 درجة مئوية) لمدة لا تزيد عن 24 ساعة. لا تجمد الأنبوب. ستجرى الدراسة من خلايا الدم والبلازما.

HBV- DNA. تحديد تركيز HBV-DNA عن طريق تفاعل البوليميراز المتسلسل التنافسي
HCV-RNA (تقييم شبه كمي) + مضاد لـ HCV ؛ HCV-RNA مع التنميط الجيني HCV + anti-HCV ؛ التهاب الكبد جي. TTV-DNA

مادة التحقيق في مصل الدم.

تحضير المريض ، وجمع المواد البيولوجية وشروط نقلها لجمع الدم الوريدي وتحضير المصل ، انظر القسم الخاص بتحديد تركيز homones بواسطة ELISA. يخضع المصل الذي لا يحتوي على شوائب كرات الدم الحمراء للبحث. إذا كان من الضروري تخزين عينة الدم المختبرة لفترة طويلة (فقط لالتهاب الكبد B ، C ، G) ، فمن الضروري أخذ 1 مل من المصل أو بلازما الدم وتخزينها في درجة حرارة -20 درجة مئوية بدون أكثر من أسبوعين.

دراسة شاملة عن التهاب المهبل البكتيري

مادة تم فحصها مسحات من الجزء الخلفي السفلي من المهبل.

للتشخيصات المعقدة التهاب المهبل الجرثوميمن الضروري:
خذ كشط الخلايا الظهارية من القبو الخلفي أو الجانبي للمهبل على شريحة زجاجية منفصلة يمكن التخلص منها ، قم بتوقيعها وتجفيفها. احفظ الزجاج في درجة حرارة الغرفة.
قم بإزالة المخاط وأخذ كشط الخلايا الظهارية من القبو الخلفي أو الجانبي للمهبل باستخدام مسبار فرشاة عنق الرحم القابل للتصرف في أنبوب PCR مع كاشف DNA-EXPRESS. قم بتخزين أنبوب الاختبار في المجمد عند درجة حرارة أقل من 20 درجة مئوية لمدة تصل إلى 10 أيام.
أرسل الشريحة الزجاجية وأنبوب PCR إلى مختبر "Litekh" باتجاه ممتلئ بالكامل.

جمع المواد البيولوجية وشروط نقلها

شاهد ميزات أخذ المواد من المهبل للدراسات الخلوية ودراسات تفاعل البوليميراز المتسلسل.

إذا كان من الضروري إجراء تحليل متأخر (النقل لمسافات طويلة ، عطل فني بالجهاز ، وما إلى ذلك) ، يتم تخزين عينات الدم في الثلاجة (4 درجة مئوية - 8 درجات مئوية) وفحصها في غضون 24 ساعة. ومع ذلك ، يجب أن يؤخذ في الاعتبار أن الخلايا تتضخم والمعلمات المرتبطة بتغيير حجمها. عمليا الأشخاص الأصحاءهذه التغييرات ليست حرجة ولا تؤثر على المعلمات الكمية ، ولكن في وجود الخلايا المرضية ، يمكن أن تتغير الأخيرة أو حتى تنهار في غضون ساعات قليلة من لحظة أخذ عينات الدم.

قبل الدراسة مباشرة ، يجب خلط الدم جيدًا لعدة دقائق لتخفيف مانع التخثر وتوزيع العناصر المكونة في البلازما بالتساوي. لا يوصى بخلط العينات المستمر على المدى الطويل حتى لحظة بحثهم بسبب احتمال إصابة الخلايا المرضية وتعفنها.

يتم إجراء اختبار الدم على جهاز التحليل الآلي في درجة حرارة الغرفة. يجب أولاً تدفئة الدم المخزن في الثلاجة إلى درجة حرارة الغرفة ، حيث تزداد لزوجة الدم في درجات الحرارة المنخفضة وتميل خلايا الدم إلى الالتصاق ببعضها البعض ، مما يؤدي بدوره إلى اختلال الخلط وعدم اكتمال التحلل. قد تتسبب دراسة الدم البارد في ظهور "إشارات إنذار" بسبب ضغط مخطط الكريات البيض.

عند إجراء دراسات الدم على مسافة كبيرة من مكان أخذ عينات الدم ، تنشأ حتما مشاكل مرتبطة بظروف النقل غير المواتية. يمكن أن يؤثر تأثير العوامل الميكانيكية (الاهتزاز ، والاهتزاز ، والخلط ، وما إلى ذلك) ، وظروف درجة الحرارة ، واحتمال انسكاب العينات وتلوثها على جودة التحليلات. للتخلص من هذه الأسباب ، عند نقل أنابيب الدم ، يوصى باستخدام أنابيب بلاستيكية محكمة الإغلاق وحاويات نقل خاصة متساوية الحرارة. أثناء النقل ، لا يُسمح بملامسة العينة (مع المواد الأصلية) واستمارة الإحالة ، وفقًا لقواعد السلامة البيولوجية.

^ 4.3 استقبال وتسجيل المواد البيولوجية

يتم تسليم الأنابيب التي تحتوي على عينات الدم الوريدي إلى المختبر في يوم أخذها في رفوف في أكياس خاصة لتوصيل المواد البيولوجية ، حيث يجب أن تكون الأنابيب في وضع عمودي ، وعند نقلها عبر مسافة بعيدة - في حاويات خاصة .

يجب على موظف المختبر الذي يتلقى المواد التحقق مما يلي:

صحة الإحالة: يشير نموذج الإحالة إلى بيانات الموضوع (الاسم الأخير ، والاسم الأول ، والعائلة ، والعمر ، وتاريخ الحالة ، أو رقم بطاقة العيادة الخارجية ، والقسم ، والتشخيص ، والعلاج) ؛

وضع ملصقات على أنابيب الاختبار مع عينات الدم (يجب أن يتم تمييزها برمز أو لقب المريض المطابق للرمز واللقب في استمارة إرسال المواد للدراسة). يجب على مساعد المختبر تسجيل المواد المسلمة ، مع ملاحظة عدد أنابيب الاختبار.

^ 4.4 حساب التركيب الخلوي للدم على محلل الدم

يجب أن يتم حساب التركيب الخلوي للدم على جهاز تحليل الدم بما يتفق بدقة مع التعليمات الخاصة بالجهاز.

عند العمل على محلل أمراض الدم ، يجب عليك:

استخدام الدم المثبت مع K-2 EDTA بالنسب الموصى بها للملح المحدد وأنابيب أمراض الدم التي يمكن التخلص منها (عادي أو مفرغ) ؛

قبل التحليل ، امزج الأنبوب بالدم بعناية ولكن بشكل كامل (يوصى باستخدام جهاز لخلط عينات الدم - rotomix لهذا الغرض) ؛

استخدام الكواشف المسجلة بالطريقة المقررة ؛ عند تغيير الكواشف إلى منتجات من مصنع آخر ، تحقق من معايرة الجهاز واضبطها ؛

بدء تشغيل الجهاز ، ومراقبة جميع مراحل التنظيف ، وتحقيق قيم الصفر (الخلفية) للمؤشرات لجميع القنوات ؛

انتبه إلى رسائل الجهاز حول الأخطاء المنهجية المحتملة: تذكر أن الزيادة في MCHC أعلى القيم العادية، عادة نتيجة لخطأ في القياس ؛

إذا تم الكشف عن خطأ ، فمن الضروري القضاء على السبب ، لا تعمل على جهاز معيب ؛

تنفيذ إجراءات مراقبة الجودة وفقًا للبرنامج المناسب. مع تقييم النتيجة ؛

العمل بشكل هادف ، ومقارنة النتائج التي تم الحصول عليها مع الخصائص السريرية لعينات المريض ؛

بعد انتهاء القياسات ، اشطف المحلل جيدًا ؛

عند إيقاف الجهاز لفترة طويلة ، من الضروري تنفيذ جميع إجراءات الحفظ (بالتعاون مع مهندس الخدمة إن أمكن) ؛

في حالة حدوث مشاكل فنية ، يجب عليك الاستعانة بمهندس خدمة من شركة لديها ترخيص للصيانة ؛ لا تكلف بالعمل لأفراد غير مدربين.

عند البدء في العمل على محلل الدم ، ينبغي للمرء أن يأخذ في الاعتبار حدود الخطية لقياس المعلمات التي تم تحليلها. يمكن أن يؤدي تقييم العينات بقيم المعلمات التي تم تحليلها والتي تتجاوز حد القياس الخطي إلى نتائج خاطئة. في معظم الحالات ، عند تحليل العينات مع فرط الخلايا ، يعرض المحلل "D" (مخفف) بدلاً من قيمة المعلمة المقاسة ، مما يشير إلى الحاجة إلى تخفيف العينة وإعادة القياس. يجب إجراء التخفيف حتى يتم الحصول على نتائج نهائية مماثلة في التخفيفين التاليين.

^ PRI me R يتم تقديم تحليل لعينة مريض مصاب بفرط الكريات البيض على ثلاثة أجهزة تحليل دم مختلفة في الجدول.

الجدول 3

تم إجراء نتائج عد فرط الكريات البيض على ثلاثة أجهزة تحليل مختلفة لأمراض الدم

1. 
   ^ معايرة أجهزة تحليل الدم

وهو ما يحقق المساواة إلى الصفر للمكون المنتظم للخطأ (صفر تحيز) أو يؤكد أن التحيز صفري مع مراعاة خطأ المعايرة. يمكن إجراء معايرة أجهزة تحليل الدم بطريقتين رئيسيتين:

للدم الكامل

بناءً على عينات الدم المثبتة بقيم معتمدة.

^ 5.1 معايرة الدم الكامل

يمكن إجراء معايرة الدم الكامل من خلال المقارنة مع محلل مرجعي ، تم التحقق من معايرته ويمكن اعتباره أصلية.

للمعايرة عن طريق المقارنة مع المحلل المرجعي ، يتم استخدام 20 عينة من الدم الوريدي للمريض ، يتم اختيارها عشوائيًا من برنامج البحث اليومي للمختبر الذي يحتوي على محلل مرجعي. يجب أن يؤخذ الدم في أنابيب مفرغة مع مضاد التخثر K 2 EDTA. بعد تحليل المحلل المرجعي ، يتم تسليم أنابيب الدم إلى المختبر لتحليلها على الجهاز الذي تتم معايرته. يجب ألا يتجاوز الوقت بين القياسات على المرجع والمحلل المعاير 4 ساعات. يجب إجراء تحليل عينات المعايرة على الجهاز المراد معايرته بنفس طريقة تحليل عينات المرضى. يتم إدخال النتائج التي تم الحصول عليها في جدول بالشكل الوارد في الملحق 1. وتستخدم هذه النتائج لتحديد عوامل المعايرة المقابلة ، والتي تساوي عدديًا معاملات ميل خطوط المعايرة المستقيمة التي تمر عبر الأصل على الرسم البياني.

يتم حساب عوامل المعايرة على جهاز كمبيوتر باستخدام برنامج EXCEL المضمن في حزمة Microsoft OFFICE لأي إصدار. لحساب عوامل المعايرة في هذا البرنامج ، يتم إنشاء مخطط مبعثر ، حيث يتم رسم القيم المقاسة على طول المحور X ، ويتم رسم القيم المرجعية على طول المحور Y ، ويتم تعيين خط الانحدار من خلال الأصل. يرسم البرنامج خط معايرة ويحدد ميله ، وهو عامل المعايرة المطلوب. إذا تم اكتشاف أخطاء جسيمة - نقاط مفصولة بشكل كبير عن خط المعايرة على الرسم البياني ، فيجب إزالتها من الحساب (احذف السطر بأكمله في جدول EXCEL). يتم إدخال عامل المعايرة الناتج في جدول الملحق 1 ويتم استخدامه لضبط معايرة الجهاز يدويًا وفقًا لتعليمات التشغيل الخاصة به.

1. 
   ^ المعايرة مقابل عينات الدم المثبتة بقيم معتمدة

كلما كان ذلك ممكنًا ، يجب استخدام أجهزة المعايرة المصممة خصيصًا من قبل الشركة المصنعة لمعايرة نوع معين من أجهزة التحليل. تتوافق أخطاء نقطة الضبط في أجهزة معايرة أمراض الدم الحديثة بشكل عام مع المتطلبات الطبية. ومع ذلك ، لا تحتوي جميع أنواع أجهزة التحليل على أجهزة معايرة من هذا القبيل. بالإضافة إلى ذلك ، بسبب العمر الافتراضي المحدود (عادة لا يزيد عن 45 يومًا) ، ليس من الممكن دائمًا الحصول على عينات غير منتهية الصلاحية.

لم يتم تصميم مواد التحكم من قبل الشركة المصنعة لأغراض المعايرة: التفاوتات المسموح بها للقيم أوسع بكثير ، وطرق التحقق من الصحة والتحكم في الإنتاج ليست صارمة مثل أجهزة المعايرة. أثناء المعايرة ، يمكن استخدام مواد التحكم فقط كأحد مصادر المعلومات حول الخصائص المترولوجية للجهاز.

ومع ذلك ، يجب ألا يغيب عن الأذهان أنه عند استخدام كل من مواد التحكم وأجهزة المعايرة لأغراض المعايرة ، فإن ميزات تحضير العينة وتشغيل أجهزة التحليل لها تأثير كبير على مكونات الخطأ المنهجي. لا يمكن أخذ هذه العوامل المؤثرة في الاعتبار عند المعايرة بالمواد التجارية. نتيجة لذلك ، في جميع الحالات ، يجب التحقق من المعايرة التي تم إجراؤها من خلال تحليل إحصائيات النتائج التي تم الحصول عليها في عينات المرضى (مؤشرات كرات الدم الحمراء ، فترات القيم الطبيعية).

5.2.1 فترات المعايرة لمحللي أمراض الدم

عادة ما توجد متطلبات الفاصل الزمني للمعايرة في دليل تعليمات المحلل. كقاعدة عامة ، تكون المعايرة مطلوبة بعد الإصلاح أو عند اكتشاف انحراف كبير في إجراءات مراقبة الجودة الداخلية.

5.2.2 إجراء المعايرة

يتم تنفيذ إجراء المعايرة وفقًا لدليل تعليمات جهاز التحليل.

5.2.3 فحص نتيجة المعايرة

يتكون عنصر التحكم هذا من تحليل عينة المعايرة مباشرة بعد المعايرة. يتم قبول المعايرة التي تم إجراؤها إذا كانت نتائج التحليل تتوافق مع قيم المعايرة ، مع مراعاة التباين التحليلي للمحلل.

5.2.4 التحقق من المعايرة باستخدام مؤشرات RBC

تستخدم طريقة التحقق من المعايرة هذه وتنقيحها حقيقة أن القيم المتوسطة لمؤشرات كرات الدم الحمراء - MCHC و MCH و MCV للمرضى لها اختلاف طفيف إلى حد ما ، وبالتالي يمكن استخدامها بشكل فعال للتحكم في المعايرة والمزيد من مراقبة الجودة. العدد الموصى به من العينات لحساب المتوسط ​​هو 20. يمكن استخدام أي عينة مريض لتحديد متوسط ​​MCHC ، بينما يجب استبعاد مرضى فقر الدم من متوسط ​​MCHC و MCV.

يحتوي العديد من محللي أمراض الدم الحديثين على برامج مدمجة لحساب المتوسطات الحالية ، مما يبسط معالجة البيانات بشكل كبير.

القيم المستهدفة لمؤشرات كرات الدم الحمراء ، بمتوسط ​​20 عينة من المرضى الذين تتراوح أعمارهم بين 18 و 60 عامًا ، بغض النظر عن الجنس ، موضحة في الجدول 4.

الجدول 4

القيم المستهدفة لمؤشرات كريات الدم الحمراء

إذا كانت القيم المتوسطة التي تم الحصول عليها خارج نطاق تحمل التحكم ، فهذا يعني أن معايرة MCV أو Hgb أو RBC تحتاج إلى تصحيح.

عند تحديد أسباب المعايرة غير المرضية من دراسة معلمات كرات الدم الحمراء عند استخدام مواد المعايرة / التحكم التجارية ، يجب مراعاة التقييم التالي لموثوقية القيم المعتمدة للمواد:

المعلمة الأكثر دقة واستقرارًا هي تركيز كريات الدم الحمراء.

Hgb متغير ثابت ، ولكنه قد يعتمد على الكواشف المستخدمة (على سبيل المثال ، السيانيد أو الخالي من السيانيد) ؛

أكثر المعلمات غير المستقرة هي MCV. تميل قيمة MCV إلى التغيير خلال العمر الافتراضي الكامل للمادة في نطاق واسع إلى حد ما من القيم. عند تنقية معايرة MCV ، فإن البيانات التي تم الحصول عليها من تحليل متوسطات مؤشرات كريات الدم الحمراء لها الأسبقية على القيم المعتمدة في عينات الدم المستقرة.

بافتراض أن معايرة كرات الدم الحمراء صحيحة ، يشير الجدول 5 أسباب محتملةالخروج من متوسط ​​قيم المؤشرات خارج نطاق التحكم.

الجدول 5

أسباب تجاوز متوسط ​​قيم مؤشرات كرات الدم الحمراء

قواعد أخذ وتخزين ونقل المواد الحيوية

للكشف عن مسببات الأمراض عن طريق تفاعل البوليميراز المتسلسل

1.1.1. يتم أخذ المادة الحيوية من الموائل المتوقعة للكائنات الحية الدقيقة وتطور العدوى.

1.1.2. يجب أن تكون كمية المواد المجمعة صغيرة. يؤثر الإفراز الزائد والمخاط والقيح سلبًا على جودة استخراج الحمض النووي ويساهم في تدهور الحمض النووي أثناء التخزين والنقل.

1.1.3. عند إدخال مادة حيوية مأخوذة من مريض بمسبار بقطعة قطن أو فرشاة في أنبوب إيبندورف بمحلول عازل ، فمن الضروري:

مراقبة العقم

قبل غمر المادة الحيوية التي تم جمعها على السدادة (الفرشاة) في المحلول ، قم بتلطيخها على الجدار الجاف لأنبوب الاختبار ، ثم قم بترطيب السدادة (الفرشاة) في المحلول ، وقم بتدوير المسبار ، واغسل جميع المواد تمامًا من جدار أنبوب الاختبار والسدادة القطنية (الفرشاة) ؛

إذا أمكن ، قم بضغط المسحة على جدار أنبوب الاختبار ، ثم قم بإزالة المسبار باستخدام المسحة (الفرشاة) وأغلق أنبوب الاختبار.

طرق أخذ المواد الحيوية للبحث عن طريق تفاعل البوليميراز المتسلسل

1.2.1. القصاصات.بالنسبة للكشط ، يتم استخدام المجسات المعقمة التي تستخدم لمرة واحدة والتي تحتوي على مسحة قطنية مع زيادة الامتصاص أو "الفرش" ، وغالبًا ما تكون ملاعق فولكمان أو ملاعق الأذن الصغيرة أو الأدوات المماثلة ذات الحواف غير الحادة قليلاً. حركات القشط لجمع المواد. يجب أن تحتوي مادة الاختبار على أكبر عدد ممكن من الخلايا الظهارية وأقل كمية من المخاط والدم والشوائب الإفرازية. نقل المواد إلى أنبوب معقم إيبندورف مع محلول عازلة (انظر القسم 1.1.).

الكشط من قناة عنق الرحم:قبل أخذ الكشط ، من الضروري إزالة المخاط الزائد بقطعة قطن معقمة ، وعلاج عنق الرحم بمحلول ملحي معقم. أدخل المسبار في قناة عنق الرحم على عمق 0.5-1.5 سم ، وتجنب ملامسة جدران المهبل ، واجمع المادة بحركة كشط (وليس للدم). لا يؤثر عدد قليل من خلايا الدم الحمراء في العينة على نتيجة التحليل. في حالة تآكل عنق الرحم ، يتم أخذ المادة من حدود الأنسجة السليمة والمتغيرة.

كشط من مجرى البول:أدخل المسبار في مجرى البول (عند الرجال - على عمق 2-4 سم) واجمع المادة بعدة حركات دورانية. في الليلة السابقة لأخذ المادة ، يُسمح بالاستفزاز (طعام حار ، كحول ، إلخ). يوصى بالامتناع عن التبول لمدة 1-2 ساعة قبل أخذ العينات. في حالة وجود إفرازات قيحية وفيرة ، يجب أن تؤخذ الكشط في موعد لا يتجاوز 15 دقيقة بعد التبول.

كشط من الملتحمةخذ ، بعد تخدير العين مسبقًا بمحلول 0.5 ٪ من الدايكايين. لف الجفن ، استخدم مسبارًا بقطعة قطن (أو مشرط عين) لجمعه الخلايا الظهاريةمن الملتحمة.

القشط من المستقيم:أدخل المسبار في فتحة الشرج على عمق 3-4 سم وجمع المادة بحركة دورانية.

1.2.2. حدود.باستخدام مسبار معقم يمكن التخلص منه باستخدام قطعة قطن أو فرشاة ، خذ كمية صغيرة من الإفرازات (من أقبية المهبل ، من البلعوم ، البلعوم الأنفي ، إلخ) وانقلها إلى أنبوب إيبندورف المعقم بمحلول عازل (انظر القسم 1.1.).

1.2.3. الدم.لاختبار PCR ، يجب أن يكون الدم محلي(لا كرة لولبية).

جمع الدم بطريقة معقمة ، عن طريق بزل الوريد - في أنبوب اختبار يحمل علامة تجارية (2-3 مل) مع EDTA مضاد للتخثر ( لا ينبغي استخدام الهيبارين كمضاد للتخثر!) ، امزج بلطف عن طريق قلب الأنبوب برفق.

الدم مع EDTA هو مادة حيوية لمجموعات البحث التالية:

- البحث الجيني(لحظة أخذ عينات الدم لا تهم).

- الكشف عن العوامل المعدية(الأكثر إفادة هي العينات المأخوذة أثناء القشعريرة ، حرارة عالية، أي يفترض أثناء الإصابة بالفيروس أو تجرثم الدم).

1.2.4. البول.في وعاء معقم فارغ بغطاء لولبي محكم ، اجمع الجزء الأول أو الأوسط من البول في الصباح بكمية لا تقل عن 10 مل. إذا تم أخذ عينة من البول خلال النهار ، فقبل ذلك يجب على المريض عدم التبول لمدة 1.5-3 ساعات.

1.2.5. اللعاب.في الصباح ، عقم الفم والحلق (اشطفه بمحلول من صودا الخبز). جمع البلغم في قارورة فارغة معقمة واسعة الفم.

1.2.6. خزعة.يجب أن تؤخذ المادة من منطقة الموقع المزعوم للعامل المعدي ، أو من الأنسجة التالفة أو المنطقة المجاورة للضرر. ضع الخزعة في أنبوب معقم إيبندورف بمحلول عازل.

1.2.7. اللعاب ، عصير المعدة ، السائل الدماغي الشوكي ، السائل الزليلي.اللعاب (1-5 مل) ، عصير المعدة (1-5 مل) ، السائل النخاعي (1-1.5 مل) - ضع في أنبوب اختبار معقم فارغ (وعاء).

1.2.8. عصير البروستاتا.بعد تدليك البروستاتا ، يتم جمع العصير بكمية 0.5-1 مل في أنبوب اختبار معقم فارغ (وعاء). إذا كان من المستحيل الحصول على العصير ، مباشرة بعد التدليك ، يتم جمع الجزء الأول من البول بكمية لا تزيد عن 10 مل (يحتوي هذا الجزء على عصير البروستاتا).

1.2.9. الغسيل ، غسل القصبات الهوائية (بال).باستخدام قطعة قطن معقمة و 5-7 مل من محلول ملحي ، يتم الغسل ، على سبيل المثال ، من طرف المنظار الداخلي أو منظار القصبات ، ويتم وضع 0.5-5 مل من الغسيل في أنبوب معقم فارغ (حاوية).

1.2.10. البراز.يتم وضع مسبار بقطعة قطن داخل البراز ويتم تدويره قليلاً ، لالتقاط كمية صغيرة من المواد. ثم توضع المادة في أنبوب إيبندورف معقم بمحلول منظم.