Biomateriaalin hyväksyminen ja rekisteröinti PCR-tutkimuksessa. Menetelmät biomateriaalin ottamiseksi tutkimukseen PCR:llä. PCR-tekniikka

nykyinen

MU 4.2.2039-05

MENETELMÄOHJEET

4.2. OHJAUSMENETELMÄT. BIOLOGISET JA MIKROBIOLOGiset TEKIJÄT

Tekniikka biomateriaalien keräämiseksi ja kuljettamiseksi mikrobiologisiin
laboratoriot

Esittelypäivä 2006-07-01

2. SUOSITTEE HYVÄKSYVÄÄN 6. lokakuuta 2005 (pöytäkirja nro 3).

3. HYVÄKSYNYT JA ESITTÄMÄT liittovaltion kuluttajansuojan ja ihmisten hyvinvoinnin valvontaviraston päällikkö, valtion johtava terveyslääkäri Venäjän federaatio G.G. Onishchenko 23. joulukuuta 2005

5. KÄYTETTY ENSIMMÄISTÄ ​​KERTAA.

1 käyttöalue

1 käyttöalue

1.1. Ohjeessa määritellään säännöt biologisen materiaalin keräämisestä ja kuljettamisesta mikrobiologisiin laboratorioihin laboratoriotutkimustulosten laadun parantamiseksi ja epidemioiden torjunta- ja ennaltaehkäisytoimenpiteiden järjestämiseksi sekä sairaalainfektioiden ehkäisemiseksi lääkintähenkilöstön ja potilaiden keskuudessa.

1.2. Ohjeet on tarkoitettu liittovaltion kuluttajansuoja- ja ihmissuojeluvalvontaviraston elinten ja organisaatioiden käyttöön, ja niitä voivat käyttää myös terveysviranomaiset ja -järjestöt.

2. Yleiset määräykset

2.1. Luotettavien tietojen saaminen tartuntalähteiden tunnistamisesta on välttämätöntä epidemiologisen seurannan aikana toteutettavien epidemioiden torjunta- ja ennaltaehkäisytoimenpiteiden oikea-aikaisen ja tehokkaan järjestämisen kannalta sekä väestön alttiuden arvioimiseksi.

2.2. Kehitetty tekniikka biologisten materiaalien keräämiseksi ja kuljettamiseksi mikrobiologisiin laboratorioihin mahdollistaa esianalyyttisten virheiden vähentämisen ja parantaa laboratorioiden työn laatua tulosten objektiivisoinnissa.

2.4. Ohjeita voidaan käyttää suoritettaessa laboratoriossa eristettyjen ja tunnistettujen patogeenien mikrobilääkeresistenssin epidemiologista seurantaa, optimoimalla mikrobilääkkeiden käyttöä ja toimenpiteitä resistenssin ehkäisyssä, valvonnassa ja hillitsemisessä paikallisella, alueellisella ja kansallisella tasolla.

3. Yleiset vaatimukset biologisen materiaalin näytteiden keräämiselle mikrobiologista tutkimusta varten

3.1. Lääkintähenkilöstön ja potilaiden tartunnan estämiseksi biomateriaalinäytteiden keräämisen ja laboratorioon toimituksen aikana on välttämätöntä:

älä saastuta astioiden ulkopintaa näytteiden keräämisen ja toimituksen aikana;

älä saastuta mukana tulevia asiakirjoja (viitteitä);

minimoi biomateriaalinäytteen suora kosketus lääkintätyöntekijän käsiin, joka kerää ja toimittaa sen laboratorioon;

käyttää steriilejä kertakäyttöisiä tai asianmukaisesti hyväksyttyjä säiliöitä (säiliöitä) näytteiden keräämiseen, varastointiin ja toimittamiseen näihin tarkoituksiin;

näytteiden kuljettaminen kantolaatikoissa tai pinoissa, joissa on erilliset pesät;

noudata aseptisia olosuhteita potilaan tartunnan estämiseksi invasiivisten toimenpiteiden aikana;

kerätä näytteet steriileihin kertakäyttöisiin tai lasitavaroihin (ei biomateriaalin saastuttamia, halkeamia, halkeamia tai muita vikoja ei vahingoita)

3.2. Biomateriaalinäytteet tulee kerätä seuraavasti:

ennen alkua antibioottihoito, jos tällaista mahdollisuutta ei ole - välittömästi ennen huumeiden uudelleen käyttöönottoa (vastaanottoa);

analyysin suorittamiseen tarvittava määrä (paino, tilavuus), koska riittämätön määrä biomateriaalia tutkimukseen johtaa vääriin tuloksiin;

materiaalin minimaalisella kontaminaatiolla normaalilla mikroflooralla, tk. sen läsnäolo johtaa saatujen tulosten virheelliseen tulkintaan, esimerkiksi tutkittaessa ysköstä, näytteitä nenästä, nielusta (nielusta), sukuelimistä jne.

3.3. Kun otat näytettä, varmista, että biomateriaalia sisältävää astiaa avattaessa ei laboratoriossa muodostu aerosolia: veri- ja muut ruumiinnesteet siirretään ruiskusta varovasti vaahtoamatta kuivaan ja/tai väliaineella täytettyyn ( antikoagulantti) astiat.

3.4. Ilmoita tutkimuksen suunnassa: potilaan sukunimi, nimi, sukunimi; syntymävuosi; sivukonttori, jossa hän sijaitsee; sairaushistorian numero (avohoitokortti); diagnoosi; tutkimukseen ja tutkimustehtäviin lähetetty materiaali; materiaalin ottamisen päivämäärä ja kellonaika (tunnit); antibakteeriset (immuuni)lääkkeet, jos näyte annetaan antibiootin ja/tai immunoterapian taustalla; näytteen tutkimukseen lähettävän hoitavan lääkärin (konsultin) sukunimi, nimi, sukunimi. Ruumiinavauksessa saatuja biomateriaaleja lähetettäessä ilmoitetaan myös osasto, jossa potilas kuoli.

3.5. Ennen näytteenottoa, erityisesti käytettäessä invasiivisia menetelmiä, selvitetään riskin todennäköisyys potilaalle ja hyödylle sekä tämän biomateriaalin merkitys kliinisen diagnoosin objektiivisoinnissa ja käynnissä olevien tai suunniteltujen hoitotoimenpiteiden arvioinnissa. huomioon.

4. Yleiset vaatimukset biomateriaalinäytteiden toimitukselle mikrobiologiseen laboratorioon

4.1. Kaikki kerätyt näytteet lähetetään osoitteeseen mikrobiologinen laboratorio välittömästi vastaanottamisen jälkeen, lukuun ottamatta tapauksia, joissa käytetään kontteja kuljetusvälineillä, jotka on hyväksytty käytettäväksi näihin tarkoituksiin Venäjän federaatiossa määrätyllä tavalla.

Tämä on tarpeen:

patogeenien elinkelpoisuuden säilyttäminen ja mahdollisuus eristää mikro-organismeja, jotka vaativat erityisiä viljelyolosuhteita (Haemophylus ja muut);

estää nopeasti kasvavien ja aktiivisten mikro-organismien liikakasvua;

ylläpidetään isolaattien alkupitoisuuksien suhdetta mikrobiyhdistelmien läsnä ollessa näytteessä;

näytteen kosketusajan vähentäminen joidenkin paikallisten antiseptisten aineiden kanssa, joilla voi olla antibakteerista vaikutusta;

tartunta-tulehdussairauden kliinisen diagnoosin objektiivistaminen ja hoidon tulosten arviointi.

4.2. Vaihtoehtoisten menetelmien käyttö on sallittua pidentää biomateriaalin toimitusaikaa laboratorioon.

Näytteet tulee säilyttää jääkaapissa 2–8 °C:ssa, paitsi alla mainittujen ohjeiden mukaisesti.

4.2.1. Kun näytettä säilytetään erityisessä kuljetussäiliössä (kuljetusjärjestelmä), joka on hyväksytty käytettäväksi vakiintuneen menettelyn mukaisesti, joka on steriili kertakäyttöinen putki, jossa on agar- tai nestemäinen kuljetusväliaine ja tulppaan sisäänrakennettu vanupuikko-anturi ja steriili pakattu putki. Näytteitä säilytetään tällaisissa säiliöissä huoneenlämmössä (18-20 °C). Kuljetusvälineet, erikoistiheys aktiivihiili ja ilman sitä mahdollistavat erityisiä viljelyolosuhteita vaativien mikro-organismien elinkelpoisuuden ylläpitämisen 48-72 tunnin ajan.

Anaerobi- ja ulosteflooranäytteisiin käytetään erityisiä säiliöitä, joissa on kuljetusväliaine, koeputkia, joissa on väliaine Campylobacterin ja Helicobacterin eristämiseen ja jotka on hyväksytty käytettäväksi määrätyllä tavalla. Tällaiset ympäristöt luovat mikro-organismeille anabioottisen ilmakehän, mikä auttaa hidastamaan niiden aineenvaihduntaa, estämään kasvua ja estämään niiden kuivumista ja jätetuotteiden kertymistä.

Jokainen nestemäiseen väliaineeseen kerätty näyte sekoitetaan perusteellisesti alustaan.

4.2.2. Kun verta viljellään liemessä, näyte säilytetään vastaanoton jälkeen termostaatissa 35-37 °C:n lämpötilassa.

Jos näytteet kerätään erityisiin säiliöihin myöhempää tutkimusta varten kaksifaasisella väliaineella, ne on säilytettävä huoneenlämmössä (18-20 °C).

4.2.3. Jos lämpötilasta riippuvaisia ​​mikro-organismeja (Neisseria sp.) saattaa esiintyä, näytteet jätetään huoneenlämpöön (18-20 °C).

4.3. Käytä aerobien ja fakultatiivisten anaerobien esiintymisen varalta tutkittujen näytteiden kuljettamiseen:

kertakäyttöiset steriilit kuivat koeputket, joissa on sisäänrakennettu vanupuikko (mukulat) tai säiliöt, joissa on kuljetusväline, joka on hyväksytty käytettäväksi näihin tarkoituksiin Venäjän federaatiossa määrätyllä tavalla; on sallittua käyttää steriilejä lasiputkia, jotka on suljettu kaasua läpäisevällä tulpalla laboratoriossa valmistetulla sisäänrakennetulla vanupuikolla;

kertakäyttöiset steriilit säiliöt, joissa on kierrekorkki (lasi, jossa on kaasua läpäisevä tulppa, ovat sallittuja) - näytteiden keräämiseen virtsasta, ysköstä, ulosteesta, bronko-alveolaarisesta huuhtelusta, biopsiasta (kudospalat) -materiaalista;

steriilit kertakäyttöiset kierrekorkilla tai lasikoeputkilla - steriilien nesteiden keräämiseen, bronko-alveolaariseen huuhteluun, erotettuna viemäristä tai raapuista;

steriilit petrimaljat - hiusnäytteiden keräämiseen tai raapujen kuljettamiseen astian pohjassa olevilla merkinnöillä;

erityiset steriilit nenänielun ja urogenitaaliset vanupuikkokoettimet, joissa on alumiiniakseli (akselin halkaisija - 0,9 mm) ja pieni puuvilla- tai viskoosipuikko kärjessä (tamponin halkaisija - 2,5 mm), joka on asennettu tulppaan, joka sulkee steriilin kertakäyttöisen lasiputken - näytteille nenänieluun B. pertusiksen osalta ja virtsaputkesta miehillä.

4.4 Anaerobien esiintymisen varalta tutkittujen näytteiden kuljettamiseen käytetään erityisillä kuljetusaineilla varustettuja säiliöitä ja koeputkia, joissa on tioglykoliväliainetta; koeputket, joissa on väliaineita kampylobakteerin ja helikobakteerin eristämiseen ja jotka on hyväksytty käytettäväksi näihin tarkoituksiin Venäjän federaatiossa määrätyllä tavalla. Nestemäiseen väliaineeseen kerätty näyte sekoitetaan sen kanssa perusteellisesti. Seuraavia menetelmiä suositellaan näytteiden saamiseksi:

poisto viemäristä, joita käytetään onteloiden aktiiviseen aspiraatioon, imetään steriilillä ruiskulla, jossa on tiukka mäntä, tilavuudessa 2-4 ml; täytettyyn ruiskuun laitetaan steriili neula, suljetaan steriilillä pumpulipuikolla, ylimääräinen ilma poistetaan ruiskusta; pumpulipuikko pudotetaan desinfiointiliuokseen; neulan pää ruiskutetaan steriiliin kumitulppaan ja tässä muodossa ruisku materiaalilla toimitetaan laboratorioon;

ne puhkaisemalla saatujen infektiopesäkkeiden ja onteloiden sisältö kerätään 2-4 ml:n tilavuuteen 2, 5, 10 ml:n ruiskuilla, joissa on tiukka mäntä; ylimääräinen ilma poistetaan ruiskusta peittämällä neula steriilillä pumpulipuikolla, joka sitten heitetään desinfiointiliuokseen; neula desinfioidaan pyyhkimällä 70-prosenttisella etyylialkoholilla kostutetulla vanupuikolla; sulkemista varten neulan pää ruiskutetaan steriiliin kumitulppaan ja tässä muodossa ruisku materiaalineen toimitetaan laboratorioon.

Kun kerätään suuri määrä materiaalia (3 ml tai enemmän), anaerobiset bakteerit voivat pysyä elävinä 24 tuntia huoneenlämpötilassa (18-20 °C).

Jos vuotoa on vain muutama tippa, se siirretään ruiskusta pieneen astiaan tai koeputkeen kuljetusväliaineen kanssa heti vastaanottamisen jälkeen (säiliö kuljetusaineineen vastaanotetaan laboratorioon edellisenä päivänä).

Kudospalat (biopsiamateriaali) anaerobisen infektion epäilyssä kerätään steriileihin kertakäyttöisiin kierrekorkkiin (sallittu - lasiastiaan, jossa on hiottu kansi) ja toimitetaan välittömästi laboratorioon.

4.5. Virusten esiintymisen varalta tutkittujen näytteiden kuljetukseen käytetään erityisiä säiliöitä, joissa on nestemäinen väliaine virusten säilyttämiseksi.

5. Näytteet erilaisista biomateriaaleista ja potilasta ympäröivästä ympäristöstä

pöytä 1

Lasitavarat, joita käytetään näytteiden toimittamiseen laboratorioon

Merkintä. Mätä-, neste- ja kudosnäytteet tulee toimittaa laboratorioon erityisissä steriileissä kertakäyttöastioissa, joissa on kierrekorkki. Vanupuikkokoettimet - kuivaa steriileissä kertakäyttöisissä koeputkissa (mukuloissa) tai astioissa, joissa on kuljetusväliaine, jos materiaalia ei voida toimittaa laboratorioon heti näytteenoton jälkeen. Näihin tarkoituksiin voit käyttää kuljetusvälineitä, mm. kertakäyttöisissä koeputkissa, jotka on pakattu yhdessä steriilillä vanupuikolla, joka on hyväksytty käytettäväksi Venäjän federaatiossa määrätyllä tavalla. Anturi-tamponit valmistetaan (valmistellaan) useista materiaaleista: itse tamponille (puuvillaharso, puuvilla, viskoosi, Dacron), anturi-tamponin akselille (puu, muovi, ruostumaton metalli - titaani, teräs, alumiini) ja tiheä agar-elatusaine: hiilen kanssa ja ilman anaerobeja.


Monet kliinisesti merkittävät anaerobit, kuten Clostridium perfringens, Bacteroides fragilis, sietävät riittävästi happea ja säilyvät hyvin suuressa määrässä mätä-, nestenäytteitä ja kehon kudoksia sekä vanupuikkokoettimessa erikoiskuljetuksessa tai tioglykolissa. media.

Myös hapelle herkemmät (esim. fusobakteerit) säilyvät hyvin biologisen materiaalin näytteessä, ja jos materiaali kylvetään 2-3 tunnin sisällä sen keräämisestä, toimitustapaan ei vaadita erityistä huomiota. . Erityisiä viljelyolosuhteita vaativat anaerobit eivät selviä vanupuikkokoettimella kuljetussäiliössä, jossa on väliainetta, jota ei ole tarkoitettu anaerobien kuljettamiseen, lukuun ottamatta säiliöitä, joissa on erityisiä kuljetusaineita tai tioglykolia.

Samaan aikaan nämä mikro-organismit kasvavat 5-7 päivää pidempään kuin aika, jonka aikana useimmat käytännön laboratoriot inkuboivat astioita, joihin on ympätty materiaalia aerobien ja fakultatiivisten anaerobien eristämiseksi ja tunnistamiseksi. Tästä syystä rutiinitutkinta anaerobien esiintymisen varalta erityisillä kuljetusanaerobisilla väliainesäiliöillä ei näytä tavallisissa käytännön laboratorioissa tarkoituksenmukaiselta, ja voi rajoittua koeputkiin, joissa on tioglykoliväliainetta.

Näytteiden keräämiseen ja kuljetukseen käytetään väliaineita, säiliöitä, työkaluja ja materiaaleja, jotka on hyväksytty käytettäväksi Venäjän federaatiossa määrätyllä tavalla.

6. Säännöt ja tekniikat näytteiden saamiseksi erityyppisestä biologisesta materiaalista mikrobiologista tutkimusta varten

Invasiivisia menetelmiä vaativan näytteen ottamisen potilaalta suosittelee lääkärin tehtävä (lukuun ottamatta verinäytettä, jonka hoitohoitaja voi ottaa).

Jos materiaalia on kerättävä vanupuikolla avoimella käyttöpinnalla tai muussa invasiivisessa toimenpiteessä, on sallittua käyttää valmiita vanupuikkoantureita, joiden kansainvälinen turvallisuustaso on vähintään luokka IIA ja jotka on hyväksytty näihin käyttöön tarkoituksiin Venäjän federaatiossa säädetyllä tavalla.

6.1. verinäytteitä

Näytteet biologisten tekijöiden esiintymisen määrittämiseksi veressä (bakteremia, viremia jne.) saadaan laskimopunktiolla ääreislaskimoista (usein kyynärpäälaskimosta), valtimoista tai vastasyntyneiden kantapäästä.

Näytteenotto suonensisäisistä tai valtimoiden sisäisistä katereista on sallittu vain tapauksissa, joissa epäillään katetriin liittyvää infektiota tai jos sitä ei voida saada laskimopunktiolla.

6.1.1. Akuutissa sepsiksessä, aivokalvontulehduksessa, osteomyeliitissä, niveltulehduksessa, akuutissa hoitamattomassa bakteerikeuhkokuumeessa ja pyelonefriitissä otetaan 2 näytettä kahdesta suonesta tai verisuonen kahdesta osasta ennen antibioottihoidon aloittamista.

6.1.2. Jos epäilet endokardiitin ja hitaan sepsiksen esiintymistä, kun patogeenipitoisuus veressä on pieni (10-30 CFU / ml):

akuutin prosessin yhteydessä otetaan 2 näytettä kahdesta suonen osasta (eri verisuonet) ensimmäisten 1-2 tunnin aikana kehon lämpötilan noususta (ei lämpötilan huipulla!) ja ennen hoidon aloittamista ;

subakuutti tai hidas kulku, 3 näytettä otetaan ensimmäisenä päivänä vähintään 15 minuutin välein. Jos kaikki näytteet ovat negatiivisia, toisena päivänä kylvöstä otetaan 3 lisää;

potilailta, joilla on endokardiitti ja jotka saavat antibiootteja, kerätään 2 erillistä näytettä jokaisena kolmena päivänä, jolloin hoidon kliininen dynamiikka on positiivinen;

"tarttuvan endokardiitin" kliinisen diagnoosin vahvistamiseksi, jos potilaalta ei ole mahdollista saada tarvittavaa määrää verinäytteitä mikrobiologista analyysiä varten tai jos viljelmät ovat negatiivisia, verinäytteitä lähetetään kehon puolustusjärjestelmän immunologisten tekijöiden tutkimukseen. (anti-infektioresistenssijärjestelmä - SAIR); toimitus laboratorioon tapahtuu steriileissä lasi- tai kertakäyttöisissä kannellisissa (korkki) koeputkissa, jotka on hankittu edellisenä päivänä laboratoriosta;

jos potilaalla on synnynnäinen sydänsairaus (CHD), on muistettava, että sepelvaltimotauti on infektoivan endokardiitin esiaste ja CAD:n immunologisten tekijöiden määrittäminen sisältyy potilaan tutkimusalgoritmiin.

6.1.3. Potilailta, joiden hoito sisältää antibiootteja, kerätään 6 näytettä 48 tunnin kuluessa; näytteet on otettava välittömästi ennen seuraavan lääkeannoksen antamista (ottamista).

6.1.4. Jos potilaalla on tuntemattoman alkuperän kuumetta, otetaan aluksi 2 näytettä eri verisuonista (suonen kahdesta osasta), sitten 24-36 tunnin kuluttua 2 näytettä lisää kehon lämpötilan nousun taustalla (ei lämpötilan huippu!).

6.1.5. Verinäytteen ottotekniikka. Verinäytteiden kerääminen viljelyä varten tehdään 2 henkilön toimesta potilaan sängyn vieressä tai hoitohuoneessa.

Saadaksesi näytteen toimi seuraavasti:

desinfioi pistoon valitun suonen yläpuolella oleva ihoalue: käsittele iho 70-prosenttiseen etyylialkoholiin kostutetulla vanupuikolla, sitten toisella 1-2-prosenttiseen jodiliuokseen kostutetulla vanupuikolla tai muulla tähän tarkoitukseen hyväksytyllä desinfiointiaineella määrätyllä tavalla, pyörivin liikkein, alkaen keskustasta, 30 sekunnin sisällä;

odota, kunnes käsitelty alue kuivuu. Suonen tunnustelu ei ole sallittua ihohoidon jälkeen ennen neulan asettamista;

kun työskentelet injektiopullojen kanssa kaksoisväliaineella: kerää steriilillä ruiskulla 10 ml verta aikuisilta, lapsilta - 5 ml; avaa pullo henkilampun liekin päällä; ruiskuta verta injektiopulloon ruiskusta neulan poistamisen jälkeen; polta injektiopullon kaula ja korkki alkoholilampun liekissä, sulje pullo korkilla; Sekoita sen sisältö varovasti, jotta injektiopullon tulppa ei kastuisi.

Käytettäessä valmiita injektiopulloja väliaineella ja reagensseilla, jotka neutraloivat antibiootteja ja tuhoavat verisoluja, tai ilman niitä, jotka on hyväksytty käytettäväksi näihin tarkoituksiin Venäjän federaatiossa määrätyllä tavalla, aikuiset saavat 10-30 ml verta, lapset - 0,5 - 3,0 ml.

Jossa:

Samanaikaisesti ihoalueen desinfioinnin kanssa puhkaisua varten pullonkorkit käsitellään 70-prosenttisella etyylialkoholilla (jodiliuosta ei saa käyttää korkkien hoitoon pullojen kanssa työskennellessä, esim. Bactec, Vital ja muut vastaavat käyttöön hyväksytyt näihin tarkoituksiin Venäjän federaatiossa vahvistetussa järjestyksessä);

veri, joka on saatu aikuisilta yhtäläisinä tilavuuksina, samalla kun lävistetään säiliön tulppa, syötetään "aerobisiin" ja "anaerobisiin" säiliöihin; lapsilta saatu veri - erityisessä "vauvan" pullossa puhkaisemalla säiliön korkkia.

6.1.6. Suonenpunktion ja veriviljelyn jälkeen astiassa, jossa on väliaine mahdollisen ärsytyksen (palovamman) estämiseksi, jodijäämät poistetaan potilaan ihoalueelta 70-prosenttisella etyylialkoholilla kostutetulla vanupuikolla.

6.2. Keskushermoston (CNS) tarttuvien ja tulehdusprosessien testit

6.2.1. Viina. 4,0-5,5 ml aivo-selkäydinnestettä, joka on saatu lannepunktiolla nikamien L3-L4, L4-L5 tai L5-S1 välisestä subarachnoidisesta tilasta sekä aivojen lateraalikammioista, lähetetään mikrobiologiseen laboratorioon tutkimukseen .

Näytteenotto suoritetaan täyttämällä hitaasti kolme koeputkea kolmella annoksella materiaalia laboratoriotutkimusta varten. Käytä steriilejä koeputkia, joissa on tiiviit kannet (kertakäyttöiset tulpalla tai lasilla, jossa on steriili kumitulppa).

Kolmesta lannepunktioputkesta lähetä aina se putki, jonka sisältö on samein, yleensä keräysprosessin toinen putki.

Kun materiaali on vastaanotettu aivojen sivukammioiden puhkaisulla, ruiskusta juuri otettu aivo-selkäydinneste, jonka neula on aiemmin poistettu, viedään steriiliin koeputkeen alkoholilampun liekin päällä, koeputken kaula. ja korkki poltetaan alkoholilampun liekissä (käytettäessä lasikoeputkea, joka on sinetöity puuvillaharso- tai kumitulpilla), suljetussa tulppaputkessa.

Kaikissa aivokalvontulehdusepäilyissä aivo-selkäydinnesteen lisäksi kerätään materiaalia väitetyistä infektiopesäkkeistä: vanupuikkoja nenänielusta, välikorvasta, verinäytteitä ja lähetetään laboratorioon aivo-selkäydinnesteen mukana. hyvällä tavalla Meningokokkien pitkäaikaissäilytys (jopa 48 tuntia) on materiaalin ottaminen koeputkella tamponilla ja laittaminen koeputkeen kuljetusväliaineen kanssa joko aktiivihiilellä tai ilman.

Mikrobiologiseen tutkimukseen tarkoitettu lipeä lähetetään välittömästi laboratorioon lämmitystyynyllä, jotta lämpötila pysyy 35-37 °C:ssa. Jos tämä ei ole mahdollista, aivo-selkäydinneste kerätään säiliöön kuljetusväliaineen kanssa ja jätetään jääkaappiin (4-8 ° C:n lämpötilaan) aamuun asti ja toimitetaan sitten laboratorioon.

Jos on tarpeen suorittaa virologisia tutkimuksia, CSF-näytteet asetetaan jääkaappiin 2–8 ° C: n lämpötilaan tai pakastetaan tai säilytetään huoneenlämpötilassa erityisellä nestemäisellä väliaineella varustetuissa astioissa.

6.2.2. Materiaali aivopaiseista. Ottaen huomioon, että 90 %:ssa tapauksista näytteessä kasvaa anaerobeja, materiaali aspiroidaan fokuksesta ja lähetetään laboratorioon säiliöissä, joissa on Venäjän federaatiossa näihin tarkoituksiin hyväksyttyä anaerobista väliainetta määrätyllä tavalla tai ruiskussa. jolla näyte kerättiin, neulan poistamisen jälkeen ja sulje ruisku steriilillä kumitulpalla.

Näyte toimitetaan heti vastaanottamisen jälkeen.

6.2.3. biopsiamateriaalia. Näytteet otetaan leikkauksen aikana, asetetaan säiliöön, jossa on anaerobista väliainetta, tai steriiliin koeputkeen, jossa on tioglykoliväliainetta ja suljetaan steriilillä kumitulpalla.

Materiaali lähetetään välittömästi laboratorioon.

6.3. Testit silmien tarttuvien ja tulehdusprosessien varalta

Suurin osa silmänäytteistä ottaa silmälääkäri. Nämä näytteet tulee inokuloida ravintoalustaan ​​potilaan sängyn vieressä tai hoitohuoneessa tai lääkärin vastaanotolla vastaanottohetkellä, ja inokuloitu materiaali tulee siirtää laboratorioon viljelyä, eristämistä, tunnistamista ja antibioottiherkkyyden määrittämistä varten. taudinaiheuttajia. Invasiivisilla ja muilla aggressiivisilla menetelmillä otetut näytteet kerätään rinnakkain sidekalvopuikon kanssa, joka näissä tapauksissa toimii kontrollina.

Peruuta edellisenä päivänä 6-8 tunnin ajaksi kaikki lääkkeet ja toimenpiteet.

Tartunta-inflammatorisen prosessin spesifisten kliinisten ilmenemismuotojen tai lääkärin epäilyjen ilmetessä on välttämätöntä valmistella ennen nukutusta näytteet klamydian ja virusten määrittämiseksi, ja lääkkeet lähetetään laboratorioon. Klamydian ja virusten säilyttämiseksi materiaali kerätään säiliöihin kuljetusvälineineen.

Vuoto kerätään steriilillä lasisauvalla tai steriilillä tamponilla: tehdään kaksi tai kolme liikettä pitkin alemman siirtymäpoimun limakalvoa silmäluomien reunasta; haavalla - sarveiskalvosta (anestesian jälkeen), "kulmaisella sidekalvotulehduksella" - silmäluomien kulmista.

Kyynelpussin salaisuus kerätään steriilillä vanupuikolla hellävaraisen hieronnan jälkeen.

Tikulla ja/tai vanupuikolla otettu materiaali asetetaan säiliöön kuljetusväliaineen kanssa tai steriiliin lasiputkeen, jossa on nestemäistä väliainetta ja toimitetaan laboratorioon varoen kastele selluloosa- tai puuvillaharsotulppaa. putki.

Puikkokoettimia käytettäessä on suositeltavaa käyttää kertakäyttöisiä astioita, joissa on kuljetusväliaine, tai steriilejä lasiputkia, joissa on puuvillaharsotulppa ja täytetty steriilillä väliaineella.

Oikein tieto tulehdusprosessin aiheuttajasta saadaan raapimien mikrobiologisesta analyysistä.

6.3.1. Sidekalvotulehdus ja blefarokonjunktiviitti. Edellisenä päivänä sairaalassa olevilta potilailta perutaan 6-8 tunnin ajaksi kaikki lääkkeet ja toimenpiteet.

Näytteet sidekalvosta kerätään käyttämällä steriiliä, esikostutettua viskoosi- tai kalsiumalginaattianturi-tamponia, joka on sijoitettu kertakäyttöiseen steriiliin putkeen tai lasiputkeen. Näytteet kustakin silmästä kerätään erillisillä vanupuikoilla kahdella tai kolmella pyöreällä liikkeellä limakalvon yli.

Mukulat, joissa on vanupuikko kummastakin silmästä, merkitsevät "oikealle" ja "vasemmalle" ja heti lähetetty laboratorioon.

Ennen kaapimista ruiskutetaan 1-2 tippaa anestesiaa, esimerkiksi proparakaiinihydrokloridia tai muuta, joka on saatavilla ja hyväksytty käytettäväksi määrätyllä tavalla näihin tarkoituksiin.

Kahdella tai kolmella lyhyellä terävällä liikkeellä yhteen suuntaan, sidekalvon raaput kerätään erityisellä steriilillä lastalla. Käsittelyn aikana silmän tulee olla auki.

Varo koskettamasta ripsiä näytettä otettaessa.

Valmista vähintään 2 sivelyä kummastakin silmästä levittämällä materiaalia puhtaalle, rasvattomalle lasilevylle pyörivin liikkein halkaisijaltaan 1 cm:n alueelle.

Levyt kiinnitetään 5 minuutin ajan 95-prosenttisessa metyylialkoholissa, joka on erityisessä, tiiviisti suljetussa astiassa.

Heti laboratorioon siirretään koeputket vanupuikolla ja lasit sivelynä.

6.3.2. bakteerinen keratiitti. Edellisenä päivänä sairaalassa olevilta potilailta perutaan 6-8 tunnin ajaksi kaikki lääkkeet ja toimenpiteet.

Ota 2 näytettä sidekalvosta kohdassa 6.3.1 kuvatulla tavalla, koska viljelytulokset voivat olla hyödyllisiä sarveiskalvon kontaminaation lähteen määrittämisessä (yhtä näytettä käytetään, jos epäillään sieni-infektiota).

Jos epäillään virusinfektiota, sidekalvoneste ja kaapimalla saatu materiaali asetetaan erityiseen virusten kuljetusalustaan.

Anestesia suoritetaan kohdan 6.3.1 mukaisesti.

Kerää 3-5 kaavinta kohdassa 6.3.1 kuvatulla menetelmällä.

Kerätty materiaali laitetaan pieneen (5 ml) steriiliin kertakäyttöiseen putkeen, jossa on kierrekorkki tai steriiliin lasiputkeen, jossa on kumitulppa ja joka on täytetty väliaineella.

Valmistetaan 2–3 sivelyä lasilevylle ja kiinnitetään kuivumisen jälkeen kappaleessa 6.3.1 kuvatulla tavalla.

Heti kaikki materiaali lähetetään laboratorioon.

6.3.3. Bakteerien endoftalmiitti. nestemäinen näyte lasimainen ruumis(1-2 ml) kerätään hienolla neulaimulla ja näyte otetaan vitrektomian aikana.

Tee seuraavaksi seuraava:

Kun neula on poistettu ruiskusta, sen sisältö laitetaan kertakäyttöiseen steriiliin astiaan, jossa on kierrekorkki, tai koeputkeen, joka on tiiviisti suljettu kumitulpalla;

näyte materiaalista voidaan jättää ruiskuun poistamalla ilma ja poistamalla neula, sulje ruisku steriilillä kumitulpalla;

kerätään näyte sidekalvosta kohdan 6.3.1 mukaisesti;

kaikki materiaali heti lähetetty laboratorioon.

6.3.4. Preseptaalinen selluliitti. Iho käsitellään 70-prosenttisella etyylialkoholilla ja 1-2-prosenttisella jodiliuoksella tai jodoformilla tai muulla saatavilla olevalla määrätyllä tavalla käyttöön hyväksytyllä desinfiointiaineella.

Jos avointa haavaa ei ole, ylempi tai alempi silmäluomen lävistetään materiaalin keräämiseksi.

Avoimen haavan ollessa läsnä näyte märkivästä materiaalista otetaan neulalla varustetulla ruiskulla.

Valmistetaan sivelyt lasilevylle kohdassa 6.3.1 kuvatulla tavalla.

Kerätty materiaali siirretään kuljetussäiliöön, jossa on anaerobeille tarkoitettuja väliaineita tai jätetään se ruiskuun, joka suljetaan tulpalla sen jälkeen, kun siitä on poistettu ilma ja poistettu neula.

Kerätty materiaali ja tahrat heti lähetetty laboratorioon.

6.3.5. Orbitaalinen selluliitti. Kerää aspiraatti vyöhykkeeltä edellä kohdassa 6.3.2 kuvatun menetelmän mukaisesti.

Otetaan näyte sidekalvosta ja valmistetaan sivelyt lasilevylle kohdan 6.3.1 mukaisesti.

Käytä laboratorioon toimitettaessa kohdassa 6.3.3 kuvattuja materiaaleja.

Potilaalta otetaan verinäytteitä kohdassa 6.1 kuvatun menetelmän mukaisesti. Verinäytteet, kaikki kerätty materiaali siirretään laboratorioon.

6.3.6. Kyynelrauhasen tulehdus (dakryadeniitti).

Märkivä sisältö kerätään näytteenottimella kohdan 6.3.1 mukaisesti.

Älä käytä aspiraatiomenetelmää neulalla, jotta kyynelrauhasen eheys ei häiriinny.

Vanupuikkokoetin ja sivelylasit siirretään laboratorioon.

6.3.7. Kyynelpussin tulehdus (dakryokystiitti). Ota näyte sidekalvosta kappaleen 6.3.1 mukaisesti.

Hiero ja paina kyynelpussia saadaksesi näyte eritteestä viljelyä ja sivelynäytteiden valmistusta varten, tai muulla menetelmällä erite kerätään ruiskulla ja neulalla.

Aseta kerätty eksudaattinäyte kuljetussäiliöihin edellä kuvatulla tavalla ja toimita laboratorioon.

6.3.8. Kanakuliitti. Paina silmäluomen sisäosaa saadaksesi mätä.

Jatkotyöt suoritetaan aiemmin tässä osiossa kuvattujen menetelmien mukaisesti.

Jos lääketieteellisessä ja ennaltaehkäisevässä organisaatiossa on erikoistunut osasto (klinikka), kaikki viljat tehdään potilaan sängyn vieressä laboratoriossa hankituille ravintoaineille. Inokuloitu materiaali yhdessä valmistettujen sivelynäytteiden kanssa siirretään laboratorioon.

6.4 Testit korvan tarttuvien ja tulehdusprosessien varalta

6.4.1. Jos ulkokorva on vaurioitunut, iho käsitellään 70-prosenttisella alkoholilla, minkä jälkeen se pestään steriilillä suolaliuoksella. Vuoto kohdistamisesta kerätään steriiliin kertakäyttöiseen koetinpuikkoon mukulasta tai koeputkista, joissa on kuljetusväliaine, tai steriiliin lasiputkeen kiinnitetylle, tulpalla suljettuun vanupuikkoon, joko erityisväliaineella tai ilman. Vanupuikko asetetaan koeputkeen ja toimitetaan laboratorioon.

6.4.2. Keski- ja sisäkorvan vaurioiden sattuessa kerätään pisteet ja muu leikkauksen aikana saatu materiaali. Punktaatit toimitetaan laboratorioon suljetussa ruiskussa, jossa on aiemmin poistettu ilma. Kudosnäytteet - kuljetussäiliössä, jossa on anaerobinen väliaine, joka on hyväksytty käytettäväksi näihin tarkoituksiin Venäjän federaatiossa vakiintuneen menettelyn mukaisesti, tai steriilissä kertakäyttösäiliössä, jossa on kierrekorkki. On mahdollista käyttää steriiliä lasiputkea, joka on suljettu steriilillä kumitulpalla.

6.4.3. Välikorvan tulehdusten mikrobiologiseen diagnosointiin tehdään tärykalvon tympanosenteesi vain tapauksissa, joissa potilas ei reagoi aikaisempaan hoitoon tai jos potilaalla on kivuton välikorvatulehdus, vaikka ulostyöntyvässä veressä ei olisi eritteitä (siemennys nenänielusta on positiivinen alle 90 % tapauksista).

Näytteen saamiseksi ulkoinen kanava puhdistetaan 70-prosenttisella etanolilla kostutetulla vanupuikolla, minkä jälkeen käsitellään steriilillä suolaliuoksella.

Neste kerätään ruiskulla täryontelo. Näyte toimitetaan laboratorioon steriilissä kierrekorkilla varustetussa kertakäyttöastiassa tai suljetussa ruiskussa, josta on aiemmin poistettu ilma.

Jos tärykalvo on vaurioitunut, materiaali kerätään vanupuikolla peilin avulla. Vanupuikko asetetaan steriiliin kertakäyttöiseen koeputkeen (mukulaan) tai säiliöön, jossa on kuljetusväliaine (saa käyttää steriiliä lasiputkea väliaineen kanssa tai ilman) ja toimitetaan laboratorioon tässä muodossa.

6.5 Testit hengitysteiden infektio- ja tulehdusprosessien varalta

6.5.1. ylempiä hengitysteitä. Jos potilaalla epäillään kurkkumätä, hinkuyskä, klamydia, mykoplasmoosi, legionelloosi, tippuri, laboratoriotyöntekijöille tiedotetaan ennen näytteen toimittamista, jotta he valmistautuvat tämän tyyppisen materiaalin analysointiin.

6.5.1.1. Näyte nenäontelon etuosien limakalvoista kerätään yhdellä steriilillä vanupuikolla, joka on asennettu steriiliin kertakäyttöiseen putkeen (tubeser) tai erityisesti asennettuna steriiliin lasiputkeen:

poista vanupuikko koeputkesta, aseta se oikeaan sieraimeen ja kierrä materiaalia nenän siiveistä ja nenäaukon yläkulmasta;

toista vasemman sieraimen käsittely;

vanupuikko asetetaan koeputkeen ja toimitetaan laboratorioon.

Tällä tavalla saadut näytteet ovat hyödyllisiä määritettäessä Staphylococcus aureuksen kantajaa lääketieteen työntekijöillä, sairaalainfektioiden patogeenien esiintymistä sekä ylempien hengitysteiden limakalvojen dysbioottisten häiriöiden karakterisointia potilaiden kattavan kliinisen ja immunomikrobiologisen tutkimuksen aikana. tieteellisissä ja käytännön laboratorioissa.

Jos nenäontelossa on tulehdus- tai haavapesäkkeitä, pesäkkeistä (pesäkkeistä) kerätään materiaalia erillisellä vanupuikolla.

6.5.1.2. Aspiraatit nenänielusta kerätään pyogeenisten streptokokkien, meningokokkien, kurkkumätä- ja hinkuyskäpatogeenien kuljettamisen määrittämiseksi sekä suoritettaessa epidemiologisia tutkimuksia S. pneumoniaen ja H. influenzaen mikrobilääkeresistenssistä:

imumateriaali nenänielusta;

siirrä materiaali steriiliin kertakäyttöiseen astiaan, jossa on kierrekorkki tai erityiseen steriiliin putkeen, jossa on kaasua läpäisevä selluloosa- tai puuvillaharsotulppa, varoen kastele sitä kliinisen materiaalin näytteellä.

6.5.1.3. Nenänielusta närästys. Aineisto kerätään meningokokkien kantavuuden ja hinkuyskän diagnoosin määrittämiseksi.

Varovasti pyörivin liikkein pitkin alemman nenäkäytävän, puuvilla-, viskoosi- tai kalsiumalginaattianturi-tamponi työnnetään vuorotellen nenänieluun nenänieluun. Samanaikaisesti nenän siivet painetaan vanupuikkoa ja nenän väliseinää vasten, jotta ne ovat tiiviimmin kosketuksissa limakalvoon.

Vanupuikko asetetaan steriiliin putkeen ja toimitetaan laboratorioon.

6.5.1.4. Nenähuuhtelua käytetään bakteeri-, mutta myös pääasiassa virusinfektion esiintymisen määrittämiseen.

Varoita potilasta olemaan nielemättä toimenpiteen aikana.

Potilaan pää asetetaan ylös-selkäasentoon noin 70° kulmaan, kumpaankin sieraimeen ruiskutetaan 5 ml steriiliä suolaliuosta, potilaan tulee olla tässä asennossa 3-5 sekuntia.

Materiaalin keräämiseksi potilaan pää lasketaan eteenpäin niin, että neste valuu sieraimista steriiliin kertakäyttöiseen astiaan tai neste imetään viemällä kumia jokaiseen sieraimeen.

Aseta yhtä suuri määrä pesuainetta viruksensiirtoväliainesäiliöön tai toimita tämä osa steriiliin kertakäyttöiseen astiaan.

6.5.1.5. Sinus-punktio. Erityisesti koulutettu kokenut lääkäri tai otolaryngologi ottaa materiaalia poskiontelosta ruiskuaspiraatiotekniikalla. Ruiskun sisältö laitetaan säiliöön, jossa on kuljetusväliaine anaerobeille, tai steriiliin putkeen, jossa on tioglykoliväliainetta. Voit jättää materiaalin ruiskuun ja steriilillä kumitulpalla sulkemisen jälkeen toimittaa sen laboratorioon.

6.5.1.6. Näytteen ottaminen nielun (nielun) limakalvolta.

Ei saa kerätä materiaalia nielusta (nielusta), jossa on tulehtunut kurkunpää, koska toimenpide voi johtaa vakavaan hengitystukkoon.

Kun otat näytteitä nielun (nielun) limakalvolta, älä kosketa limakalvoja poskiin, kieleen, ikeniin, huuliin pumpulla, äläkä kerää sylkeä, koska tämä materiaali luonnehtii suuontelon limakalvoja, eli , ylempi maha-suolikanava.

Vanupuikko nielusta (nielusta) otetaan tyhjään mahaan tai 3-4 tuntia aterian jälkeen. Ennen näytteen ottamista potilaan tulee huuhdella suunsa lämpimällä keitetyllä vedellä.

Näytteen saamiseksi käytetään steriiliä lastaa tai vanupuikkoa: steriilistä kertakäyttöputkesta (tubeser) poistetaan viskoosipuikko tai käytetään laboratoriossa valmistettua vanupuikkoa, joka kiinnitetään steriiliin lasikoeputkeen. Viskoosipäällä varustetun vanupuikkosondin käyttö on suositeltavaa, koska viskoosi imee vähemmän nestettä ja enemmän solumateriaalia.

Yhdellä kädellä potilaan kieltä painetaan steriilillä lastalla.

Ainetta kerätään toisella kädellä, käsittelemällä vuorotellen oikeaa risaa, oikeaa palatiinikaaria, vasenta risaa, vasenta palatiinikaaria, uvulaa tamponilla, uvulan tasolla kosketetaan nielun takaseinää. tamponi.

Tällä tavalla saadut näytteet ovat hyödyllisiä määritettäessä sairaalainfektion aiheuttajan esiintyminen sekä karakterisoitaessa ylempien hengitysteiden limakalvojen dysbioottisia häiriöitä potilaiden kattavan kliinisen ja immunomikrobiologisen tutkimuksen aikana tieteellisissä ja käytännön laboratorioissa. .

Jos limakalvolla on tulehdus- tai haavapesäkkeitä, he ovat erityisen tarkkaavaisia ​​näytteiden ottamisessa ja lisäksi keräävät materiaalia pesäkkeistä (pesäkkeistä) erillisellä vanupuikolla.

Vanupuikko asetetaan steriiliin kertakäyttöiseen tai lasiputkeen ja toimitetaan laboratorioon.

6.5.1.7. Jos kurkkumätä epäillään, siitä informoidaan laboratoriotyöntekijöitä ja diagnoosi ilmoitetaan lähetteessä.

Hengityspatologisen prosessin tapauksessa materiaalia kerätään samanaikaisesti nenänielun ja nielun limakalvoilta aiemmin esitettyjen menetelmien mukaisesti.

Jos epäillään kurkkumätän ihomuotoa, materiaalia kerätään iholta sekä nielun (nielun) ja nenänielun limakalvoilta ja kaikki näytteet toimitetaan laboratorioon.

6.5.2. alempia hengitysteitä. Mikrobiologinen diagnostiikka tulehdusprosessit alemmissa hengitysteissä aiheuttaa vakavia vaikeuksia, tk. keräyksen aikana näyte voi olla kontaminoitunut mikro-organismeilla, jotka kolonisoivat ylempiä hengitysteitä. Tämä ekologinen markkinarako on kylvetty melko runsaasti opportunistisilla mikrobeilla, etenkin kun esiintyy dysbakterioosia (laadullinen - lajikoostumus ja/tai määrällinen - CFU / ml esiintyvien lajien pitoisuus heikentyneessä ja / tai immuunipuutteisessa koehenkilöiden kontingentissa).

Tästä syystä materiaalinäytteitä alemmista hengitysteistä kerätään erityisen huolellisesti, jotta saadaan oikeat tiedot etiologisesta tekijästä (aiheuttajista). Käytettäessä invasiivisia menetelmiä näytteen keräämiseen (jos sitä ei tapahdu leikkauksen aikana), käytetyt instrumentit kulkevat ylempien hengitysteiden läpi, ja on todellinen mahdollisuus kylvää syvempiä lokuksia mikro-organismeilla - ylempien hengitysteiden asukkailla.

6.5.2.1. yskös.

Löyhästi erotettu (odotettu) yskös- Mieluiten aamulla.

Ennen näytteen ottamista potilaan tulee mahdollisuuksien mukaan pestä hampaansa ja huuhdella suunsa ja kurkku lämpimällä keitetyllä vedellä, jos potilas ei pysty tekemään tätä itse, hänen suuontelokäymälän suorittavat lääketieteen työntekijät .

Varoita potilasta, ettei se kerää sylkeä tai nenänielun vuotoa säiliöön.

Syvän yskän seurauksena saatu yskösnäyte kerätään erityiseen steriiliin kertakäyttöiseen astiaan, jossa on kierrekorkki, tai erityisesti valmistettuun steriiliin lasipurkkiin.

Yskösnäyte lähetetään laboratorioon.

Indusoitunut yskös (suositellaan ensisijaisesti epäillylle Mycobacterium tuberculosis- ja Pneumocystis yiroveci -bakteerille)- Mieluiten aamulla.

Ennen näytteen ottamista potilaan tulee mahdollisuuksien mukaan pestä hampaansa ja huuhdella suunsa ja kurkku lämpimällä, keitetyllä vedellä; jos potilas ei pysty tekemään sitä itse, lääkintähenkilöstö suorittaa hänen suuontelon wc: n.

Ennen toimenpidettä kostuta puhdas hammasharja lämmintä keitettyä vettä ja juota se molempien poskien, kielen ja ikenien limakalvoille.

Huuhtele potilaan suu aktiivisesti lämpimällä keitetyllä vedellä.

Anna potilaalle niellä 20-30 ml 3-10 % steriiliä suolaliuosta inhalaattorilla.

Kerää indusoitunut yskös erityiseen steriiliin kertakäyttöiseen astiaan, jossa on kierrekorkki tai sopivasti valmistettuun steriiliin lasipurkkiin.

Lähetä näyte laboratorioon.

Samanaikaisesti yskösnäytteen kanssa tulee lähettää laboratorioon nielun (nielun) näyte, joka kerätään suuontelon käymälän jälkeen ja välittömästi ennen vapaasti erotetun (exectorated) tai indusoidun ysköksen keräämistä.

6.5.2.2. Trakeostomia ja endotrakeaaliset aspiraatiot. Mikro-organismit kolonisoivat trakeostomiaan jo 24 tuntia potilaan intuboinnin jälkeen, minkä seurauksena viljelytutkimuksen tuloksilla on vähäinen kliininen merkitys. Edellä esitetyn perusteella intuboitujen potilaiden viljelytuloksia tulee jatkuvasti verrata kliinisiin löydöksiin (esim. kuumeeseen tai röntgeninfiltraatteihin).

Näytteet keuhkoputkien huuhtelunesteistä tai bronkoalveolaarisesta huuhtelusta kerätään, mikäli mahdollista, ennen kaapimista tai biopsianäytteiden ottamista. Säännön sanelee tarve välttää ylimääräistä verta tuloksena olevassa nesteessä, koska. veri voi muuttaa näytteen solu- ja ei-solukomponenttien pitoisuutta ja vaikuttaa mikrobiologisen analyysin tulokseen.

Aspiraattinäyte kerätään steriiliin kertakäyttöiseen kierrekorkkiin tai steriiliin lasiastiaan kunnolla kiinnitettyyn tai steriiliin kertakäyttöiseen lasiputkeen, jossa on tulppa, tai toimitetaan laboratorioon suljetussa ruiskussa, josta ilma on poistettu.

6.5.2.3. Bronkoskoopilla otetut näytteet. Bronkoalveolaarinen huuhtelu (valittu näyte), keuhkoputkien huuhtelu (alhainen herkkyys keuhkokuumeen diagnosoinnissa), keuhkoputkien raapiminen (merkittävämpi kuin pesut), transtrakeaaliset biopsianäytteet otetaan asettamalla bronkoskooppi transnasaalisesti tai transoraalisesti ei-intuboituneeseen potilaaseen tai endotrakeaaliputken kautta intuboidulla potilaalla.

Keuhkoputken huuhtelun tai bronkoalveolaarisen huuhtelunäytteen saamiseksi:

injektoidaan ruiskulla bronkoskoopin biopsiakanavan kautta erillisinä annoksina steriiliä ei-bakteriostaattista (virallista) suolaliuosta (kokonaistilavuus 5-20 - 100 ml);

ennen kuin lisäät seuraavan annoksen suolaliuosta, ime varovasti ruiskun sisään työnnetyllä osalla steriiliin kertakäyttöiseen astiaan, jossa on kierrekorkki tai steriiliin kertakäyttöiseen tai lasiputkeen, jossa on tulppa, tai jätä se suljettuun ruiskuun, kun olet poistanut ilman se (yleensä 50-70 % ruiskutetusta suolaliuoksesta on huuhtelussa);

jokainen imetty osa kerätään erilliseen kulhoon;

toimenpiteen lopussa samalta alueelta saadut näytteet yhdistetään. Näytteitä eri sivustoilta (esim ylälohko keuhko ja oikea alalohko) tulee yhdistää vasta hoitavan lääkärin kanssa;

osoittavat ruiskutetun suolaliuoksen kokonaismäärän.

Keuhkoputkien kaavinnäytteen saamiseksi:

bronkoskoopin biopsiakanavan kautta asetetaan teleskooppinen kaksoiskatetri, jonka distaalinen pää on käsitelty polyetyleeniglykolilla (tai muulla sopivalla reagenssilla) näytteen kontaminaation estämiseksi;

kerätä materiaali steriiliin kertakäyttöiseen astiaan, jossa on kierrekorkki, tai kuljetussäiliöön, jossa on anaerobista väliainetta, tai steriiliin putkeen, jossa on tioglykolia ja joka on tiiviisti suljettu steriilillä kumitulpalla;

toimittaa materiaali laboratorioon.

Transbronkiaalisen biopsian saamiseksi otetaan näyte bronkoskoopin biopsiakanavan kautta ja asetetaan se steriiliin kertakäyttöiseen astiaan, jossa on kierrekorkki, jossa on pieni määrä (1-2 ml) ei-bakteriostaattista (virallista) suolaliuosta tai tioglykolia sisältävässä koeputkessa, joka on tiiviisti suljettu kumitulpalla, siirretään laboratorioihin

6.5.2.4. Keuhkojen aspiraattinäytteet. Näytteenottoa varten neula työnnetään rintalastan läpi keuhkojen infiltraattiin CT-skannerin ohjauksessa. Materiaali imetään tulehduspisteestä. Jos infiltraatti on suuri tai niitä on useita, on tarpeen ottaa useita näytteitä vastaavista pesäkkeistä tai useita näytteitä yhdestä suuresta leesiosta. Aineisto siirretään laboratorioon kuljetussäiliössä, jossa on väliaine anaerobeille, tai lasiputkessa, jossa on tioglykoliväliainetta, tai kierteisessä kertakäyttöastiassa.

6.5.2.5. Keuhkobiopsianäytteet. Jos mahdollista, saadaan 1-3 cm kokoisia kudospaloja, jos vaurio on suuri tai niitä on useita, näytteitä otetaan useita. Näyte asetetaan steriiliin kertakäyttöiseen astiaan, jossa on kierrekorkki tai kuljetussäiliöön, jossa on anaerobista väliainetta, tai säiliöön (koeputkeen), jossa on tioglykolia ja joka on suljettu steriilillä kumitulpalla.

6.6. Testit virtsaelinten infektio- ja tulehdusprosessien varalta

6.6.1. Virtsanäytteet.

6.6.1.1. Näytteenoton yleiset säännöt:

virtsaa ei saa kerätä liinavaatteista tai pisuaarista;

virtsan analysointiin luonnollisen virtsaamisen aikana käytetään keskimääräistä aamuannosta;

ennen näytteen ottamista on välttämätöntä pestä ulkoiset sukuelimet ja alue perusteellisesti peräaukko lämmin keitetty vesi; erityistä huomiota on kiinnitettävä miesten virtsaputken aukon käsittelyyn (emättimen eteinen - naisilla), jotta varmistetaan, että toimenpiteen aikana näyte ei saastu enää mikrobeilla;

käsittelyssä ei saa käyttää desinfiointiaineita, koska. jos ne pääsevät näytteeseen, ne voivat estää mikro-organismien kasvua;

näyte siirretään laboratorioon viimeistään 2 tunnin kuluessa keräyksestä;

näytteiden keräämiseen ja toimittamiseen laboratorioon käytetään steriilejä kertakäyttöisiä kierrekorkilla tai -putkilla varustettuja astioita (steriilejä erikoisasennettuja lasiputkia, joissa on kaasua läpäisevä selluloosa- tai puuvillaharsotulppa, voidaan käyttää, mutta erityistä huomiota on kiinnitettävä siihen, ettei liota tulppa);

rakon suprapubisen puhkaisun tekniikalla saatujen aspiraattinäytteiden toimittaminen laboratorioon suoritetaan kuljetussäiliössä, jossa on erityinen väliaine anaerobeille, tai suljetussa ruiskussa ilman neulaa;

jos epäillään virusinfektiota, näytteet toimitetaan laboratorioon steriilissä kertakäyttöastiassa, joka on asetettu sulalle jäälle (kuivajää ei sallittu!);

kaikki menettelyt näytteen saamiseksi katetrin avulla (erityisesti naisilla) suoritetaan noudattaen huolellisesti aseptisia sääntöjä, jotta estetään potilaan lisäkontaminaatio katetrin käyttöönoton aikana;

mikrobiologiseen tutkimukseen ei saa käyttää näytettä päivittäisestä m

6.6.1.2. Virtsanäytteiden kerääminen naisilta luonnollisen virtsaamisen aikana.

Käytä keskiosaa, koska. Ensimmäisen virtsan yhteydessä tulisi poistaa kommensaalit mahdollisesti virtsaputkesta. Seuraavista kulkureiteistä kerätyn näytteen tulee olla kontaminoitumaton. Tällaisen materiaalin positiivisten tulosten luotettavuus on 80 %, kun otetaan yksi näyte, 90 %, kun otetaan kaksi peräkkäistä näytettä, ja 100 %, kun otetaan kolme näytettä, jos kaikki näytteet antavat saman tuloksen.

Näytteen ottavan terveydenhuollon työntekijän tulee pestä kätensä saippualla ja vedellä, huuhdella vedellä ja kuivata. Jos potilas ottaa näytteen itse, hänelle selitetään yksityiskohtaisesti, miten tämä tehdään, ottaen huomioon yllä kuvattu valmistelu, ja varoitetaan siitä, mitä voi tapahtua, jos hän rikkoo sääntöjä:

pese virtsaputken aukko ja emättimen eteisen alue sekä perineum ja peräaukko huolellisesti saippuavedellä tai nestesaippualla, huuhtele lämpimällä keitetyllä vedellä, kuivaa steriilillä sideharsokankaalla;

emättimen aukko on suljettava steriilillä pumpulipuikolla;

pidä ulommat häpyhuulet etäällä toisistaan ​​virtsaamisen aikana;

tyhjennä pieni määrä virtsaa erityiseen säiliöön hävittämistä varten pysäyttämättä virtsaamista;

Kerää keskimääräinen annos (10-20 ml) virtsaa erityiseen kertakäyttöiseen astiaan, jossa on kierrekorkki tai steriiliin lasiastiaan, joka on erityisesti koottu laboratoriossa.

6.6.1.3. Virtsanäytteiden kerääminen miehiltä luonnollisen virtsaamisen aikana.

Miehillä mikrobiologiseen tutkimukseen tarvitaan yksi annos virtsaa, koska. ne ovat huomattavasti vähemmän todennäköisiä kuin naiset.

Näytteenottajan tulee pestä kätensä saippualla, huuhdella vedellä ja kuivata. Jos potilas ottaa näytteitä itse, hänelle on selitettävä yksityiskohtaisesti, kuinka tämä tehdään, ottaen huomioon seuraavat valmistelut, ja varoitettava siitä, mitä voi tapahtua, jos sääntöjä rikotaan:
[sähköposti suojattu], selvitämme sen.

PCR-tutkimusten tekeminen on sallittua olemassa olevien laboratorioiden pohjalta edellyttäen, että laboratoriossa järjestetään itsenäiset tai erilliset työtilat osana muita toiminnallisia tiloja, jotka vastaavat PCR-analyysin vaiheita.

PCR-laboratorion tulee sisältää seuraavat vähimmäistyöalueet:

• materiaalin vastaanotto, rekisteröinti, analysointi ja esikäsittely;
• DNA/RNA:n eristäminen;
• reaktioseosten ja PCR:n valmistus;
• amplifikaatiotuotteiden havaitseminen elektroforeesilla tai HyFA:lla.

On tärkeää huomata, että menetelmää käytettäessä ei ole tarvetta havaita amplifikaatiotuotteita elektroforeesilla. Siksi laboratorion työskentelyaluetta elektroforeesia varten ei voida osoittaa.

PCR-laboratorioissa on myös tarpeen varmistaa aputilojen läsnäolo: arkisto (kirjanpitoasiakirjoja varten), henkilöstöhuone, johtajan toimisto, työntekijöiden pukuhuoneet, ruokasali, saniteettitilat (wc), kodinhoitohuoneet (varasto).

AT ihanteellinen testimateriaalin dekontaminointia varten on oltava autoklaavihuone. Se voidaan jakaa laitoksen muiden osastojen kanssa bioturvallisuusvaatimusten mukaisesti.

Tilat töiden suorittamiseksi PCR-analyysin vaiheissa tulee olla laatikoituja (laatikot prelaatikoilla). Materiaalin vastaanoton, rekisteröinnin, analysoinnin ja esikäsittelyn alalla suorittaa materiaalin vastaanotto, näytteen valmistelu (lajittelu, merkintä, sentrifugointi jne.), varastointi ja biomateriaalijäämien ensisijainen inaktivointi desinfiointiaineilla. Aineiston vastaanotto-, rekisteröinti-, analysointi- ja esikäsittelytila ​​sijaitsee materiaalin vastaanottohuoneessa tai erillisessä laatikkotilassa. Täällä voit vastaanottaa ja käsitellä näytteitä myös muilla menetelmillä (esimerkiksi immunologialla) tehtävää tutkimusta varten edellyttäen, että PCR-analyysiä varten on varattu erillinen varusteltu työpaikka.

DNA/RNA-uuttoalue sijoitettu erilliseen huoneeseen. Järjestettäessä PCR-laboratorio olemassa olevan laboratorion pohjalta, on sallittua eristää DNA / RNA tiloissa, joissa suoritetaan muuntyyppistä tutkimusta, paitsi geenitekniikan työssä. Tässä tapauksessa huoneeseen järjestetään DNA/RNA:n erottamista varten työskentelyalue, jossa on PCR-laatikko tai biologinen turvalaatikko. DNA/RNA-eristyksen PCR-laatikossa ei saa tehdä muita töitä!

Reaktioseosten ja PCR:n valmistuksen alalla valmistaa PCR-seos, lisää eristettyjä DNA/RNA- tai cDNA-valmisteita PCR-putkeen, RNA:n käänteistranskriptio ja DNA:n tai cDNA:n monistus. Reaktioseosten ja PCR:n valmistustilan tulee olla erillinen. Reaktio-PCR-seosten valmistus suoritetaan PCR-laatikossa.

Tarvittaessa DNA/RNA-eristysvaihe voidaan yhdistää samaan huoneeseen reaktioseosten valmistusvaiheen ja PCR:n kanssa, mikäli siinä on erilliset PCR-laatikot - reaktio-PCR-seosten valmistusta ja DNA/RNA-eristystä varten.

Vyöhyke vahvistustuotteiden havaitsemiseen sijoitetaan erilliseen huoneeseen, mikäli mahdollista varustettuna PCR-laatikolla. Jos monistustuotteiden havaitsemiseen on tarpeen käyttää samanaikaisesti elektroforeesimenetelmää ja hybridisaatioanalyysimenetelmää, hybridisaatioanalyysiä varten on varattava erillinen työalue detektiohuoneeseen. Tässä tapauksessa kunkin tunnistustyypin laitteet ja lisävarusteet on merkitty kullekin vyöhykkeelle. Hybridisaatioanalyysiin ei saa käyttää elektroforeesiin tarkoitettuja pipettejä ja maljoja.

Suunnittelupäätösten ja laitteiden sijoittamisen tulee varmistaa tutkittavan materiaalin liikkeen sujuvuus. Ilmanvaihto vahvistustuotteiden havaitsemiseen tarkoitetun huoneen ja muiden huoneiden välillä on suljettava kokonaan pois.

PCR-laboratorio varustetaan putkistolla, viemärillä, sähköllä ja lämmityksellä. Kaikissa PCR-laboratorion tiloissa on riittävästi luonnon- ja keinovaloa.

Uusien tai olemassa olevien PCR-laboratorioiden rakentamisen aikana tilat varustetaan tulo- ja poistoilmanvaihdolla. Ilmanpaine-ero PCR-laboratorion tiloissa saavutetaan niiden ilmanvaihtosuhteiden erojen vuoksi. Ilmanvaihtokurssin tulee vastata taulukossa annettuja arvoja:

PCR-laboratorioon voidaan tarvittaessa asentaa ilmastointilaitteita.

Tilojen sisustus tehdään niiden toiminnallisen tarkoituksen mukaisesti. Laboratoriotilojen seinien, lattioiden ja kattojen pintojen tulee olla sileitä, halkeamittomia, helposti käsiteltäviä, pesuaineita ja aineita kestäviä. desinfiointiaineet. Lattiat eivät saa olla liukkaita. Laboratoriokalusteessa tulee olla pesu- ja desinfiointiaineita kestävä pinnoite. Pöytien pinnassa ei saa olla halkeamia ja saumoja. Laboratoriotilojen tulee olla jyrsijöiltä ja hyönteisiltä läpäisemättömät. PCR-laboratoriossa on sammutuslaitteet.

urogenitaalinen klamydioosi

Tutkimusmateriaali Kaapiminen virtsaputkesta tai kohdunkaulan kanavasta, eturauhasen erite, virtsan sedimentti. Vastasyntyneillä tutkimusmateriaalina käytetään silmien sidekalvon ja nielun takaseinän raapumista. Tytöillä ulkosynnyttäjän kaavinta käytetään tutkimusmateriaalina, pojilla virtsaa.

Potilaan valmistelu, biologisen materiaalin ottaminen ja kuljetusolosuhteet 10 päivää ennen materiaalin ottamista tutkimukseen, kemoterapialääkkeiden käyttö on lopetettava parantavia menettelyjä.

Ominaisuudet materiaalin ottamiseen virtsaputkesta

• ennen materiaalin ottamista potilasta kehotetaan pidättäytymään virtsaamasta 1,5-2 tunnin ajan;
• välittömästi ennen materiaalin ottamista virtsaputken ulkoinen aukko on käsiteltävä steriilillä suolaliuoksella kostutetulla vanupuikolla;
• märkivien eritteiden läsnä ollessa on suositeltavaa ottaa raapi 15-20 minuuttia virtsaamisen jälkeen; jos eritteitä ei ole, on tarpeen hieroa virtsaputkea koettimella materiaalin ottamiseksi;
• naisilla ennen anturin asettamista virtsaputkeen se hierotaan häpyniveleen;
• naisten virtsaputkeen anturi työnnetään 1,0-1,5 cm:n syvyyteen, miehillä - 3-4 cm:n syvyyteen, ja sitten tehdään useita kiertoliikkeitä; lapsilla tutkimusmateriaali otetaan vain virtsaputken ulkoaukosta;

Kohdunkaulan kanavasta materiaalin ottamisen ominaisuudet

• ennen materiaalin ottamista on tarpeen poistaa lima vanupuikolla ja käsitellä kohdunkaula steriilillä suolaliuoksella;
• anturi työnnetään kohdunkaulan kanavaan 0,5-1,5 cm syvyyteen;
• kohdunkaulan kanavan eroosioiden esiintyessä ne on käsiteltävä steriilillä suolaliuoksella ja materiaali on otettava terveen ja muuttuneen kudoksen rajalta;
• kun koetinta poistetaan, sen kosketus emättimen seiniin on suljettava kokonaan pois;

Materiaalin ottamisen jälkeen koetin lasketaan koeputkeen DNA-EXPRESS-kuljetusalustalla. Sen jälkeen kun koetin on syötetty kuljetusväliaineeseen, sitä käännetään useita kertoja ja poistetaan sitten putkesta. Injektiopullo on suljettu ja merkitty. Jos biologisen materiaalin kuljetusaika ottamisesta sen laboratorioon toimittamiseen on yli 2 tuntia, putki on pakastettava -20 0 C:een. Biologisen materiaalin kuljetus tulee suorittaa vain kylmälaukku. Pakastettua biologista materiaalia voidaan säilyttää enintään 2 viikkoa.

Eturauhasen salaisuuden ottamisen ominaisuudet

Ennen eturauhasen salaisuuden ottamista, terskan penis käsitellään steriilillä, suolaliuoksella kostutetulla vanupuikolla. Eturauhasen salaisuus otetaan esirauhashieronnan jälkeen peräsuolen kautta. Lääkäri suorittaa painehieronnan useilla voimakkailla liikkeillä tyvestä yläosaan. Sitten eturauhasen salaisuus puristetaan ulos kavernoisesta osasta. Biologisen materiaalin kuljetus tulee suorittaa vain kylmälaukussa.

Virtsan ottamisen (keräämisen) ominaisuudet

Virtsa kerätään aamulla tyhjään mahaan nukkumisen jälkeen tai aikaisintaan 2-3 tuntia viimeisen virtsaamisen jälkeen. Aamuvirtsa asettuu 1 tunnin ajan, sitten sulautuu varovasti jättäen vain alaosan - noin 10 ml. Tämä jäännös kaadetaan sentrifugiputkeen ja sentrifugoidaan. Sitten supernatantti valutetaan uudelleen ja sakka (ilman nestettä) siirretään koettimella PCR-putkeen.

Virtsaa ei saa jäähdyttää tai pakastaa ennen kuin sedimentti on saatu.

Ominaisuudet materiaalin ottamisesta nielun takaseinästä

Kertakäyttöinen anturi työnnetään pehmeän kitalaen taakse nenänieluun ja viedään nielun takaseinää pitkin. Materiaalin ottamisen jälkeen koetin lasketaan koeputkeen DNA-EXPRESS-kuljetusalustalla. Sen jälkeen kun koetin on syötetty kuljetusväliaineeseen, sitä käännetään useita kertoja ja poistetaan sitten putkesta. Injektiopullo on suljettu ja merkitty. Jos biologisen materiaalin kuljetusaika ottamisesta sen laboratorioon toimitukseen on yli 2 tuntia, putki on pakastettava -200 C:een. Biologisen materiaalin kuljetus tulee suorittaa vain kylmälaukussa. Pakastettua biologista materiaalia voidaan säilyttää enintään 2 viikkoa.

Ominaisuudet materiaalin ottamiseen silmien sidekalvosta

Jos märkivä vuoto on runsasta, se poistetaan steriilillä, suolaliuoksella kostutetulla pumpulipuikolla. Raapiminen otetaan alaluomen sisäpinnalta liikuttamalla kohti silmän sisäkulmaa. Kaapimista otettaessa on tarpeen pitää silmäluomea käsilläsi, jotta silmäripset eivät kosketa mittapäätä räpäyttäessään.

Materiaalin ottamisen jälkeen koetin lasketaan koeputkeen DNA-EXPRESS-kuljetusalustalla. Sen jälkeen kun koetin on syötetty kuljetusväliaineeseen, sitä käännetään useita kertoja ja poistetaan sitten putkesta. Injektiopullo on tiiviisti suljettu. Jos biologisen materiaalin kuljetusaika ottamisesta sen laboratorioon toimitukseen on yli 2 tuntia, putki on pakastettava -200 C:een. Biologisen materiaalin kuljetus tulee suorittaa vain kylmälaukussa. Pakastettua biologista materiaalia voidaan säilyttää enintään 2 viikkoa.

Urogenitaalinen mykoplasmoosi

Tutkimusmateriaali Irrotettava virtsaputki, emätin, kohdunkaulan kanava, virtsa (aamun ensimmäisen ja keskiosan sentrifugaatti), eturauhasen erite, siemenneste.

Materiaalin ottamisen ominaisuudet emättimestä

Materiaali on otettava ennen manuaalista tarkastusta. Ennen käsittelyä peili voidaan kostuttaa kuumalla vedellä; antiseptisten aineiden käyttö peilin käsittelyyn on vasta-aiheista. Emätinvuoto kerätään steriilillä kertakäyttöisellä anturilla takaraivosta tai limakalvon patologisesti muuttuneilta alueilta ja asetetaan koeputkeen DNA-EXTPESS-kuljetusväliaineen kanssa. Tytöillä materiaali otetaan emättimen eteisen limakalvolta ja joissakin tapauksissa emättimen takaosasta kalvonrenkaiden kautta. Sen jälkeen kun koetin on syötetty kuljetusväliaineeseen, sitä käännetään useita kertoja ja poistetaan sitten putkesta. Injektiopullo on suljettu ja merkitty. Jos biologisen materiaalin kuljetusaika ottamisesta sen laboratorioon toimitukseen on yli 2 tuntia, putki on pakastettava -200 C:een. Biologisen materiaalin kuljetus tulee suorittaa vain kylmälaukussa. Pakastettua biologista materiaalia voidaan säilyttää enintään 2 viikkoa.

GONORRHEA

Tutkimusmateriaali Irrotettava virtsaputki, kohdunkaulan kanava, eturauhasen erite, virtsan sedimentti.

Potilaan valmistelu, biologisen materiaalin ottaminen ja kuljetusolosuhteet Ks. urogenitaalinen klamydia.

10 päivää ennen materiaalin ottamista tutkimukseen on tarpeen lopettaa kemoterapialääkkeiden ja lääketieteellisten toimenpiteiden käyttö. Naisten tutkimusmateriaali tulee ottaa ennen kuukautisia tai 1-2 päivää kuukautisten päättymisen jälkeen. Ennen materiaalin ottamista on välttämätöntä pidättäytyä virtsaamisesta 3-4 tunnin ajan ja seksuaalisesta kanssakäymisestä. Tutkimuksen aattona olevat naiset eivät saa käydä ulkoisten sukupuolielinten wc:ssä ja suihkussa. Testimateriaalissa ei saa olla veren epäpuhtauksia. Vapaasti virtaavaa virtsaputkea ei saa ottaa tutkimukseen. Eturauhasen salaisuus tulee ottaa vasta eturauhastulehduksen akuuttien ilmenemismuotojen päättymisen jälkeen. Hitaassa ja kroonisessa gonorreassa on provokaatio tarpeen ennen tutkimusta.

Provokaatiomenetelmät tippuriin:

• biologinen: gonovacciinin (500 miljoonaa mikrobirunkoa) käyttöönotto aikuisille kerran, lihaksensisäisesti, yli 3-vuotiaille lapsille - 100-200 miljoonaa mikrobirunkoa; alle 3-vuotiaille lapsille gonovaccinin käyttöönottoa ei suositella;
• lämpö: 3 päivän diatermia vatsa-emätin-sakraalisten elektrodien järjestelyillä 30, 40, 50 minuutin ajan tai induktiotermia 10, 15, 20 minuutin ajan; on parasta ottaa materiaali virtsaputkesta, kohdunkaulan kanavasta 1 tunti jokaisen lämmittelyn jälkeen;
• mekaaninen: metallisuojuksen asettaminen naisten kohdunkaulaan 4 tunniksi, virtsaputken hieronta miehillä bougielle 10 minuutin ajan;
• ravinto: suolaisen, mausteisen ruoan ja alkoholin nauttiminen 24 tuntia ennen tutkimusta.

Materiaali otetaan provokaation jälkeen ja 24-48-72 tunnin kuluttua.

Luotettavimpien tulosten saamiseksi on tarpeen suorittaa toistuvia tutkimuksia.

TRIKOMONIASI

Tutkimusmateriaali Irrotettava virtsaputkesta (miehillä), emättimestä, eturauhasen eritteestä.

Potilaan valmistelu, biologisen materiaalin ottaminen ja kuljetusolosuhteet Ks. urogenitaalinen klamydia, urogenitaalinen mykoplasmoosi.

TUBERKULOOSI (keuhkojen ulkopuoliset kohdat)

Tutkimusmateriaali Virtsa, vanupuikkoja kohdunkaulan kanavasta, virtsaputkesta.

Potilaan valmistelu, biologisen materiaalin ottaminen ja kuljetusolosuhteet 10 päivää ennen materiaalin ottamista tutkimukseen, on tarpeen lopettaa kemoterapialääkkeiden ja lääketieteellisten toimenpiteiden käyttö. Katso urogenitaalinen klamydia.

HENGITYSTEITOSAIraudet, JOIHIN LIITTYVÄT Mycoplasma pneumoniae

Tutkimusmateriaali Nenänielun vanupuikko.

Vanupuikko nenänielusta otettaessa Vanupuikko otetaan tyhjään mahaan tai aikaisintaan 2-4 tuntia ruokailun jälkeen. Materiaalia otettaessa tarvitaan hyvä valaistus, potilas istuu valonlähdettä vasten, kielen juurta painetaan lastalla alas, materiaali otetaan steriilillä anturilla koskematta kieltä, suun limakalvoa ja hampaita, ja lasketaan koeputkeen DNA-EXPRESS-kuljetusalustalla. Materiaalin ottamisen jälkeen koetin lasketaan koeputkeen DNA-EXPRESS-kuljetusalustalla. Kun anturi on asetettu kuljetusväliaineeseen, sitä käännetään useita kertoja ja poistetaan sitten putkesta. Putki on suljettu. Jos biologisen materiaalin kuljetusaika ottamisesta sen laboratorioon toimitukseen on yli 2 tuntia, putki on pakastettava -200 C:een. Biologisen materiaalin kuljetus tulee suorittaa vain kylmälaukussa. Pakastettua biologista materiaalia voidaan säilyttää enintään 2 viikkoa.

mahalaukun sairaudet (gastriitti, mahahaava vatsa tai pohjukaissuoli) LIITTYVÄ Helicobacter pylori

Tutkimusaineisto Mahalaukun antrumin biopsiat, pohjukaissuolen biopsiat, ikenien koepalat, parodontaalitaskusta tehdyt sivelynäytteet.

Biopsiamateriaalin ottamisen ominaisuudet

Biopsiamateriaali otetaan endoskooppisen tutkimuksen yhteydessä. Ennen H. pylori -hoidon aloittamista mahalaukun antrumista otetaan biopsianäyte. Hoitoa seurattaessa otetaan koepalanäyte mahalaukun kehosta aikaisintaan 4 viikon kuluttua anti-Helicobacter-hoidosta. Otettu koepalanäyte lasketaan steriiliin kuivaan koeputkeen (eppendorf) ja toimitetaan välittömästi laboratorioon. Pidempää säilytystä varten on mahdollista jäädyttää otettu biopsia -20 0 С lämpötilassa.

Ominaisuudet biopsianäytteiden ottamisesta ikenistä, sivelynäytteitä parodontaalitaskusta ja syljestä

Biopsiamateriaalia ikenistä, sivelynäytteitä parodontaalitaskusta ja sylkeä otetaan potilailta, joilla on ollut maha- pohjukaissuolen patologia ientulehduksen ja parodontaalisen sairauden yhteydessä.

Otettu koepalanäyte lasketaan steriiliin kuivaan koeputkeen (eppendorf) ja toimitetaan välittömästi laboratorioon. Pidempää säilytystä varten on mahdollista jäädyttää otettu biopsia -20 0 С lämpötilassa.

Parodontaalitaskusta otetut sivelynäytteet kerätään steriiliin koeputkeen (eppendorf), jossa on suolaliuosta. Tässä tapauksessa koeputkia voidaan säilyttää jääkaapissa (+4 0 C - +6 0 C) enintään 12 tuntia ja ne kuljetetaan jääkaappipussissa.

VIRUSINfektiot

Herpes simplex -virus II; Citomegalovirus; H. papilomavirus 16, 18

Tutkittu materiaali - tahrat

klo herpeettinen infektio raapiminen on parasta ottaa sukupuolielinten vaurioista (rakkulat, haavaumat). Jos sukupuolielinten vaurioita ei ole, kohdunkaulan kanavasta otetaan raavi. Sytomegalovirusinfektion diagnosoinnissa tutkimukseen voidaan käyttää nielun takaseinämän sivelyä, emättimestä, virtsaputkesta ja kohdunkaulan kanavasta tehtyjä raapia, sylkeä ja aivo-selkäydinnestettä. Ihmisen papilloomavirusinfektiota diagnosoitaessa vanupuikko nenänielusta, silmän sidekalvosta, kaapiminen kohdunkaulan kanavasta, kohdunkaulasta, ts. limakalvot (keratinoitumaton epiteeli).

Biologisen materiaalin ottaminen Biologisen materiaalin ottaminen tulee mahdollisuuksien mukaan suorittaa infektion pahenemisaikana. Katso urogenitaalinen klamydia, urogenitaalinen mykoplasmoosi.

Herpes simplex -virus I; Herpes simplex -virus II; Herpes simplex -virus VI
Citomegalovirus; Epstein Barr virus

Tutkittu materiaali Alkuperäinen veri.

Potilaan valmistelu, biologisen materiaalin ottaminen ja kuljetusolosuhteet Veri on suositeltavaa ottaa tutkimukseen tyhjään mahaan.

Laskimoverta 1-1,5 ml otetaan steriiliin koeputkeen (eppendorf), jonka tilavuus on 1,5 ml EDTA-liuoksella. Koeputki, jossa on verta, säilyy jääkaapissa (+4 0 C - +6 0 C) enintään 24 tuntia. Älä jäädytä putkea. Tutkimus tehdään plasmasta ja verisoluista.

HBV-DNA; HBV-DNA-konsentraation määritys kilpailevalla PCR:llä
HCV-RNA (puolikvantitatiivinen arviointi) + anti-HCV; HCV-RNA, jossa on HCV+ anti-HCV-genotyypitys; hepatiitti G; TTV-DNA

Tutkittu materiaali Veriseerumi.

Potilaan valmistelu, biologisen materiaalin kerääminen ja kuljetusolosuhteet Laskimoveren kerääminen ja seerumin valmistus, katso kappale homonipitoisuuden määrittäminen ELISA:lla. Seerumi, joka ei sisällä erytrosyyttiepäpuhtauksia, on tutkimuksen kohteena. Jos testiverinäytettä on tarpeen säilyttää pitkään (vain B-, C-, G-hepatiitti), on otettava 1 ml seerumia tai veriplasmaa ja säilytettävä se -20 0 C lämpötilassa ilman yli 2 viikkoa.

KATTAVA TUTKIMUS BAKTEERIVAGINOOSISTA

Tutkittu materiaali Naarmuja emättimen takaosan alemmasta haarasta.

Monimutkaiseen diagnostiikkaan bakteerivaginoosi tarpeellista:
Ota epiteelisolujen raapiminen emättimen taka- tai sivusuunnasta erilliselle kertakäyttöiselle lasilevylle, allekirjoita ja kuivaa. Säilytä lasi huoneenlämmössä.
Poista lima ja ota epiteelisolut raapumalla emättimen taka- tai lateraalisesta forniksista kertakäyttöisellä kohdunkaulaharja-anturilla PCR-putkeen DNA-EXPRESS-reagenssilla. Säilytä koeputkea pakastimessa -20°C:ssa enintään 10 päivää.
Lähetä lasilevy ja PCR-putki "Litekh"-laboratorioon täysin täytettynä.

Biologisen materiaalin kerääminen ja kuljetusolosuhteet

Katso materiaalin ottamisen ominaisuudet emättimestä sytologisia ja PCR-tutkimuksia varten.

Jos on tarpeen suorittaa viivästynyt analyysi (kuljetus pitkiä matkoja, laitteen tekninen toimintahäiriö jne.), verinäytteet säilytetään jääkaapissa (4 o - 8 o C) ja tutkitaan 24 tunnin sisällä. On kuitenkin otettava huomioon, että solut turpoavat ja niiden tilavuuteen liittyvät parametrit muuttuvat. Käytännössä terveitä ihmisiä nämä muutokset eivät ole kriittisiä eivätkä vaikuta kvantitatiivisiin parametreihin, mutta patologisten solujen läsnä ollessa viimeksi mainitut voivat muuttua tai jopa romahtaa muutaman tunnin sisällä verinäytteenottohetkestä.

Välittömästi ennen tutkimusta verta sekoitetaan perusteellisesti useiden minuuttien ajan antikoagulantin laimentamiseksi ja muodostuneiden elementtien tasaiseksi jakautumiseksi plasmassa. Näytteiden pitkäaikaista jatkuvaa sekoittamista niiden tutkimushetkeen asti ei suositella mahdollisen patologisten solujen vaurion ja hajoamisen vuoksi.

Verikoe automaattisella analysaattorilla suoritetaan huoneenlämmössä. Jääkaapissa säilytettävä veri on ensin lämmitettävä huoneenlämpöiseksi, koska veren viskositeetti kasvaa alhaisissa lämpötiloissa ja verisoluilla on taipumus tarttua yhteen, mikä puolestaan ​​johtaa sekoittumisen heikkenemiseen ja epätäydelliseen hajoamiseen. Kylmän veren tutkimus voi aiheuttaa "hälytyssignaalien" esiintymisen leukosyyttihistogrammin pakkaamisen vuoksi.

Kun hematologisia tutkimuksia tehdään huomattavan etäisyyden päässä verinäytteenottopaikasta, epäsuotuisiin kuljetusolosuhteisiin liittyviä ongelmia syntyy väistämättä. Mekaanisten tekijöiden (ravistelu, tärinä, sekoittuminen jne.), lämpötilaolosuhteet, roiskeiden todennäköisyys ja näytteiden saastuminen voivat vaikuttaa analyysien laatuun. Näiden syiden poistamiseksi veriputkien kuljetuksessa on suositeltavaa käyttää hermeettisesti suljettuja muoviputkia ja erityisiä isotermisiä kuljetussäiliöitä. Näytteen (natiivimateriaalin) ja lähetelomakkeen kosketus kuljetuksen aikana ei ole sallittua biologisen turvallisuuden sääntöjen mukaisesti.

^ 4.3. Biologisen materiaalin vastaanotto ja rekisteröinti

Putket, joissa on laskimoverinäytteitä, toimitetaan laboratorioon ottopäivänä telineissä erityisissä pusseissa biologisen materiaalin toimittamista varten, joissa putkien on oltava pystyasennossa, ja kaukaa kuljetettaessa - erityisissä säiliöissä .

Materiaalin vastaanottavan laboratorion työntekijän tulee tarkistaa:

Lähetteen oikeellisuus: lähetelomakkeessa ilmoitetaan tutkittavan tiedot (sukunimi, etunimi ja sukunimi, ikä, sairaushistoria tai avohoitokortin numero, osasto, diagnoosi, hoito);

Koeputkien merkitseminen verinäytteillä (ne on merkittävä potilaan koodilla tai sukunimellä, sama kuin tutkimukseen lähetettävässä lomakkeessa oleva koodi ja sukunimi). Laboratorion tulee rekisteröidä toimitettu materiaali, merkitä koeputkien lukumäärä.

^ 4.4 Veren solukoostumuksen laskenta hematologisella analysaattorilla

Veren solukoostumuksen laskeminen hematologisella analysaattorilla on suoritettava tiukasti laitteen ohjeiden mukaisesti.

Kun työskentelet hematologisen analysaattorin parissa, sinun tulee:

Käytä K-2 EDTA:lla stabiloitua verta tietyille suola- ja kertakäyttöisille hematologiaputkille suositellussa suhteessa (tavallinen tai tyhjiö);

Ennen analyysia sekoita putki huolellisesti mutta perusteellisesti vereen (on suositeltavaa käyttää laitetta verinäytteiden sekoittamiseen - rotomix tähän tarkoitukseen);

Käytä määrätyllä tavalla rekisteröityjä reagensseja; kun vaihdat reagensseja toisen valmistajan tuotteisiin, tarkista ja aseta laitteen kalibrointi;

Käynnistä laite tarkkailemalla kaikkia huuhtelun vaiheita ja saavuttamalla kaikkien kanavien indikaattorien nolla-arvot (tausta);

Kiinnitä huomiota instrumenttien viesteihin mahdollisista systemaattisista virheistä: muista, että MCHC:n kasvu on suurempi normaalit arvot, yleensä mittausvirheen tulos;

Jos virhe havaitaan, on välttämätöntä poistaa syy, älä työskentele viallisen laitteen kanssa;

Suorita laadunvalvontamenettely asianmukaisen ohjelman mukaisesti. tuloksen arvioinnin kanssa;

Työskentele mielekkäästi vertaamalla saatuja tuloksia potilaan näytteiden kliinisiin ominaisuuksiin;

Huuhtele analysaattori perusteellisesti mittausten päätyttyä;

Kun laite pysäytetään pitkäksi ajaksi, on ehdottomasti suoritettava kaikki konservointitoimenpiteet (jos mahdollista, yhdessä huoltoinsinöörin kanssa);

Teknisissä ongelmissa kannattaa käyttää huoltoinsinöörin apua huoltoon luvan omaavasta yrityksestä; Älä anna työtä kouluttamattomille henkilöille.

Hematologisella analysaattorilla työskentelyä aloitettaessa tulee ottaa huomioon analysoitavien parametrien mittauksen lineaarisuuden rajat. Sellaisten näytteiden arviointi, joiden analysoitujen parametrien arvot ylittävät mittauksen lineaarisuuden rajan, voi johtaa virheellisiin tuloksiin. Useimmissa tapauksissa, kun analysoidaan näytteitä, joilla on hypersytoosi, analysaattori näyttää "D" (laimennus) mitatun parametrin arvon sijaan, mikä osoittaa tarpeen laimentaa näyte ja mitata uudelleen. Laimentaminen on suoritettava, kunnes samanlaiset lopulliset tulokset saadaan kahdella seuraavalla laimennuksella.

^ PRI me R ─ Hyperleukosytoosipotilaan näytteen analyysi kolmella eri hematologisella analysaattorilla on esitetty taulukossa.

Taulukko 3

¦ Hyperleukosytoosin laskentatulokset suoritettu kolmella eri hematologisella analysaattorilla

1. 
   ^ Hematologisten analysaattoreiden kalibrointi

Joka saavuttaa virheen systemaattisen komponentin nollan (nollabias) tai vahvistaa, että bias on nolla, kun otetaan huomioon kalibrointivirhe. Hematologiset analysaattorit voidaan kalibroida kahdella päätavalla:

Kokoverelle;

Perustuu stabiloituihin verinäytteisiin, joilla on sertifioidut arvot.

^ 5.1 Kokoveren kalibrointi

Kokoveren kalibrointi voidaan suorittaa vertaamalla vertailuanalysaattoriin, jonka kalibrointi on varmennettu ja voidaan pitää alkuperäisenä.

Kalibroinnissa vertailuanalysaattoriin verrattuna käytetään 20 potilaan laskimoverinäytettä, jotka valitaan satunnaisesti vertailuanalysaattorin omaavan laboratorion päivittäisestä tutkimusohjelmasta. Veri tulee ottaa tyhjiöputkiin, joissa on antikoagulanttia K 2 EDTA. Vertailuanalysaattorilla suoritetun analyysin jälkeen veriputket toimitetaan laboratorioon analysoitavaksi kalibroitavalla laitteella. Vertailuanalysaattorin ja kalibroidun analysaattorin mittausten välinen aika ei saa ylittää 4 tuntia. Kalibroitavan laitteen kalibrointinäytteiden analyysi on suoritettava samalla tavalla kuin potilasnäytteiden analyysi. Saadut tulokset merkitään taulukkoon liitteessä 1 esitetyssä muodossa. Näiden tulosten perusteella määritetään vastaavat kalibrointikertoimet, jotka ovat numeerisesti yhtä suuria kuin kaavion origon kautta kulkevien kalibrointisuorien kaltevuuden kertoimet.

Kalibrointikertoimet lasketaan tietokoneella käyttämällä EXCEL-ohjelmaa, joka sisältyy minkä tahansa version Microsoft OFFICE -pakettiin. Kalibrointikertoimien laskemiseksi tässä ohjelmassa muodostetaan sirontadiagrammi, jossa mitatut arvot piirretään X-akselia pitkin, vertailuarvot piirretään Y-akselia pitkin ja regressioviiva asetetaan origon kautta. Ohjelma piirtää kalibrointiviivan ja määrittää sen kaltevuuden, joka on haluttu kalibrointikerroin. Jos havaitaan suuria virheitä - pisteitä, jotka ovat merkittävästi erossa kaavion kalibrointiviivasta, ne on poistettava laskelmasta (poistaa koko rivi EXCEL-taulukosta). Tuloksena oleva kalibrointikerroin syötetään liitteen 1 taulukkoon ja sitä käytetään laitteen kalibroinnin manuaaliseen säätämiseen sen käyttöohjeiden mukaisesti.

1. 
   ^ Kalibrointi stabiloituja verinäytteitä vastaan ​​sertifioiduilla arvoilla

Aina kun mahdollista, tulee käyttää kalibraattoreita, jotka valmistaja on erityisesti suunnittelenut tietyntyyppisen analysaattorin kalibroimiseksi. Nykyaikaisten hematologisten kalibraattorien asetusarvovirheet täyttävät yleensä lääketieteelliset vaatimukset. Kaikilla analysaattoreilla ei kuitenkaan ole tällaisia ​​kalibraattoreita. Lisäksi rajoitetun säilyvyysajan (yleensä enintään 45 päivää) vuoksi ei ole aina mahdollista saada näytteitä, jotka eivät ole vanhentuneet.

Valmistaja ei ole tarkoittanut kontrollimateriaaleja kalibrointitarkoituksiin: arvojen toleranssit ovat paljon laajemmat, validointi- ja tuotannonvalvontamenetelmät eivät ole yhtä tiukkoja kuin kalibraattoreiden. Kalibroinnin aikana ohjausmateriaaleja voidaan käyttää vain yhtenä tietolähteenä laitteen metrologisista ominaisuuksista.

On kuitenkin syytä muistaa, että käytettäessä sekä kontrollimateriaaleja että kalibraattoreita kalibrointitarkoituksiin, näytteen valmistelun ja analysaattoreiden toiminnan ominaisuudet vaikuttavat merkittävästi systemaattisen virheen komponentteihin. Näitä vaikuttavia tekijöitä ei voida ottaa huomioon kalibroitaessa kaupallisilla materiaaleilla. Tämän seurauksena kaikissa tapauksissa suoritettu kalibrointi on varmistettava analysoimalla potilasnäytteistä saatujen tulosten tilastot (erytrosyyttiindeksit, normaaliarvojen välit).

5.2.1 Kalibrointivälit hematologisille analysaattoreille

Kalibrointivälivaatimukset löytyvät yleensä analysaattorin käyttöohjeesta. Kalibrointia tarvitaan pääsääntöisesti korjauksen jälkeen tai kun yrityksen sisäisessä laadunvalvontamenettelyssä havaitaan merkittävää poikkeamaa.

5.2.2 Kalibrointimenettely

Kalibrointi suoritetaan analysaattorin käyttöohjeen mukaisesti.

5.2.3 Kalibrointituloksen tarkistaminen

Tämä tarkistus koostuu kalibrointinäytteen analysoinnista välittömästi kalibroinnin jälkeen. Suoritettu kalibrointi hyväksytään, jos analyysin tulokset vastaavat kalibrointiarvoja, kun otetaan huomioon analysaattorin analyyttinen vaihtelu.

5.2.4 Kalibroinnin varmistus RBC-indeksien avulla

Tämä kalibroinnin todentamis- ja tarkennusmenetelmä käyttää sitä tosiasiaa, että potilaiden erytrosyyttiindeksien - MCHC, MCH ja MCV - keskiarvot vaihtelevat melko vähän, ja siksi niitä voidaan käyttää tehokkaasti kalibroinnin ohjaamiseen ja lisälaadun valvontaan. Suositeltu näytteiden määrä keskiarvon laskemista varten on 20. Mitä tahansa potilasnäytettä voidaan käyttää keskimääräisen MCHC:n määrittämiseen, kun taas anemiapotilaat tulee sulkea pois keskimääräisistä MCHC- ja MCV-arvoista.

Monissa nykyaikaisissa hematologisissa analysaattoreissa on sisäänrakennetut ohjelmat virran keskiarvojen laskemiseen, mikä yksinkertaistaa huomattavasti tietojen käsittelyä.

Punasoluindeksien tavoitearvot 20 18–60-vuotiaiden potilaiden näytteen keskiarvona sukupuolesta riippumatta on esitetty taulukossa 4.

Taulukko 4

Punasoluindeksien tavoitearvot

Jos saadut keskiarvot ovat kontrollitoleranssin ulkopuolella, tämä tarkoittaa, että MCV- tai Hgb- tai RBC-kalibrointi on korjattava.

Määritettäessä syitä epätyydyttävälle kalibroinnille erytrosyyttiparametrien tutkimuksesta käytettäessä kaupallisia kalibrointi-/kontrollimateriaaleja, on otettava huomioon seuraava materiaalien sertifioitujen arvojen luotettavuuden arviointi:

Tarkin ja ajantasaisin parametri on punasolujen pitoisuus;

Hgb on vakaa parametri, mutta se voi riippua käytetyistä reagensseista (esimerkiksi syanidi tai syaniditon);

Epävakain parametri on MCV. MCV-arvolla on taipumus muuttua materiaalin koko säilyvyysajan aikana melko laajalla arvoalueella. MCV-kalibrointia tarkentaessa erytrosyyttiindeksien keskiarvojen analysoinnista saadut tiedot ovat ensisijaisia ​​stabiloitujen verinäytteiden sertifioituihin arvoihin nähden.

Taulukko 5 osoittaa, että olettaen, että RBC-kalibrointi on oikea mahdollisia syitä indeksien keskiarvojen poistuminen ohjaustoleranssin yli.

Taulukko 5

Syitä erytrosyyttiindeksien keskiarvojen ylittämiseen

Säännöt biomateriaalin ottamisesta, varastoinnista ja kuljetuksesta

Patogeenien havaitsemiseen PCR:llä

1.1.1. Biomateriaali otetaan mikro-organismien odotetusta elinympäristöstä ja infektion kehittymisestä.

1.1.2. Kerätyn materiaalin määrän tulee olla pieni. Ylimääräinen vuoto, lima ja mätä vaikuttavat haitallisesti DNA:n uuton laatuun ja edistävät DNA:n hajoamista varastoinnin ja kuljetuksen aikana.

1.1.3. Kun potilaalta pumpulipuikolla tai siveltimellä otettua biomateriaalia viedään Eppendorf-putkeen, jossa on puskuriliuosta, on välttämätöntä:

Huomioi steriiliys;

Ennen kuin upotat tamponiin (harjaan) kerätyn biomateriaalin liuokseen, voitele se koeputken kuivalle seinälle, kostuta tamponi (harja) liuoksessa ja huuhtele anturia pyörittämällä huolellisesti kaikki materiaali koeputkesta. koeputken seinä ja tamponi (harja);

Jos mahdollista, purista vanupuikko koeputken seinää vasten, poista koetin vanupuikolla (harjalla) ja sulje koeputki.

Menetelmät biomateriaalin ottamiseksi tutkimukseen PCR:llä

1.2.1. Kaaviot. Kaapimiseen käytetään kertakäyttöisiä steriilejä antureita, joissa on tehostettua adsorptiota sisältävä vanupuikko tai ”harjoja”, harvemmin Volkmann-lusikoita, pieniä korvalusikoita tai vastaavia, hieman tylppäreunaisia ​​instrumentteja. Kaavinta liikkeet materiaalin keräämiseksi. Testimateriaalin tulee sisältää mahdollisimman paljon epiteelisoluja ja mahdollisimman vähän limaa, verta ja eritteen epäpuhtauksia. Siirrä materiaali steriiliin Eppendorf-putkeen, jossa on puskuriliuosta (katso kohta 1.1.).

Kaapiminen kohdunkaulan kanavasta: ennen kaapimista on tarpeen poistaa ylimääräinen lima steriilillä pumpulipuikolla, käsitellä kohdunkaula steriilillä suolaliuoksella. Työnnä anturi kohdunkaulan kanavaan 0,5–1,5 cm:n syvyyteen välttäen kosketusta emättimen seinämiin ja kerää materiaali kaapimalla (ei vereen). Pieni määrä punasoluja näytteessä ei vaikuta analyysin tulokseen. Kohdunkaulan eroosion esiintyessä materiaali otetaan terveen ja muuttuneen kudoksen rajalta.

Kaapiminen virtsaputkesta: aseta anturi virtsaputkeen (miehillä - 2-4 cm syvyyteen) ja kerää materiaali useilla pyörimisliikkeillä. Aattona ennen materiaalin ottamista provokaatio on sallittu (mausteinen ruoka, alkoholi jne.). On suositeltavaa pidättäytyä virtsaamasta 1-2 tuntia ennen näytteenottoa. Runsaan märkivän vuodon esiintyessä tulee kaavinta ottaa viimeistään 15 minuuttia virtsaamisen jälkeen.

Raapiminen sidekalvosta ota sen jälkeen, kun silmä on nukutettu 0,5-prosenttisella dikaiiniliuoksella. Kääntämällä silmäluomea, käytä koetinta pumpulipuikolla (tai silmäveitsellä) keräämiseen epiteelisolujen sidekalvosta.

Kaapiminen peräsuolesta: työnnä anturi peräaukkoon 3-4 cm syvyyteen ja kerää materiaali pyörivällä liikkeellä.

1.2.2. Aivohalvaukset. Käytä kertakäyttöistä steriiliä mittapäätä vanupuikolla tai harjalla, ota pieni määrä vuotoa (emättimen holveista, nielusta, nenänielestä jne.) ja siirrä se steriiliin Eppendorf-putkeen, jossa on puskuriliuosta (katso kohta). 1.1.).

1.2.3. Veri. PCR-testiä varten verta on oltava syntyperäinen(ei käpristynyt).

Kerää veri aseptisesti, laskimopunktiolla - merkittyyn koeputkeen (2-3 ml), jossa on EDTA-antikoagulanttia ( hepariinia ei saa käyttää antikoagulanttina!), sekoita varovasti kääntämällä putkea varovasti ylösalaisin.

Veri EDTA:lla on biomateriaali seuraaville tutkimusryhmille:

- geenitutkimus(verinäytteenottohetkellä ei ole väliä).

- tartunnanaiheuttajien havaitseminen(informatiivisimpia ovat vilunväristysten aikana otetut näytteet, kohonnut lämpötila eli oletettavasti viremian tai bakteremian aikana).

1.2.4. Virtsa. Tyhjään steriiliin astiaan, jossa on tiukka kierrekorkki, kerää aamulla ensimmäinen tai keskimmäinen virtsaannos vähintään 10 ml. Jos virtsanäytteet otetaan päivän aikana, potilaan ei pidä virtsata 1,5-3 tuntiin ennen sitä.

1.2.5. yskös. Aamulla desinfioi suu ja kurkku (huuhtele ruokasoodaliuoksella). Kerää yskös tyhjään steriiliin leveäsuiseen injektiopulloon.

1.2.6. Biopsia. Materiaali tulee ottaa tartunnanaiheuttajan väitetyn sijainnin vyöhykkeeltä, vaurioituneesta kudoksesta tai vaurion raja-alueelta. Aseta biopsia steriiliin Eppendorf-putkeen, jossa on puskuriliuosta.

1.2.7. Sylki, mahaneste, aivo-selkäydinneste, nivelneste. Sylki (1-5 ml), mahaneste (1-5 ml), aivo-selkäydinneste (1-1,5 ml) - laita tyhjään steriiliin koeputkeen (säiliö).

1.2.8. Eturauhasen mehu. Eturauhasen hieronnan jälkeen mehua kerätään 0,5-1 ml tyhjään steriiliin koeputkeen (säiliöön). Jos mehua ei ole mahdollista saada, heti hieronnan jälkeen kerätään ensimmäinen virtsaannos enintään 10 ml (tämä osa sisältää eturauhasen mehua).

1.2.9. Huuhtelu, bronkoalveolaarinen huuhtelu (BAL). Steriilillä pumpulipuikolla ja 5-7 ml suolaliuosta suoritetaan pesu esimerkiksi endoskoopin tai bronkoskoopin kärjestä ja 0,5-5 ml pesua laitetaan tyhjään steriiliin putkeen (säiliöön).

1.2.10. Ulosteet. Vanupuikolla varustettu anturi asetetaan ulosteen sisään ja sitä käännetään hieman, jolloin pieni määrä materiaalia vangitaan. Sitten materiaali asetetaan steriiliin Eppendorf-putkeen, jossa on puskuriliuosta.